Fauna y flora del municipio de Lipa, Arauca

Study Extent

La región del Lipa se encuentra atravesada de norte a sur por el río Lipa, afluente del río Casanare, el cual divide el área en dos paisajes: del lado occidental las selvas del Lipa y del lado oriental la sabana inundable.

Sampling

Entre los días 9 y 16 de marzo de 2013 se realizó el muestreo y colecta para seis grupos taxonómicos (flora, peces, anfibios, reptiles, aves y mamíferos) en la región del Lipa. Para los inventarios de flora se llevaron a cabo cuatro metodologías diferentes, entre las que se encuentran parcelas de 1mx1m, recorridos libres, perfiles de bosque ribereño y perfiles de macrofitas. Para realizar el inventario de los peces presentes en la cuenca del río Lipa, se realizaron muestreos en cuatro áreas: esteros, ríos, caños y préstamos (lagunas artificiales). Se emplearon diferentes aparejos de pesca que fueron usados en función de las posibilidades que se encontraron en los diferentes hábitats. En los muestreos para el registro de la herpetofauna se emplearon muestreos de encuentro visual libre (VES) y parcelas de 1x1m; para el registro de la avifauna se emplearon redes de niebla y recorridos libres donde se tuvieron en cuenta observaciones y vocalizaciones; y para el registro de la mastofauna se emplearon redes de niebla, trampas Shermman, transectos, recorridos libres y entrevistas.

Method steps

1. PECES: Se realizaron jornadas de campo estandarizadas en la jornada de la tarde (15 a 18:30), las cuales incluyeron seis artes de pesca, así: 1) Red de Arrastre o de playa (de 5 m de largo y altura de 2 m, entrenudo de 1 mm), para realizar arrastres de 1:30 h; 2) Atarraya, se realizaron lances por 1 h en cada estación; 3) Salabardos, en transectos de 100 m, se removió la vegetación de las orillas y la hojarasca por 1 h continua; 4) Espinel, se usaron cuatro anzuelos de dos números con carnada diferente, ubicados a dos profundidades por períodos de una hora; 5) Anzuelos, se usaron de dos números con carnada de pan y peces (sardinas); 6) trasmallo o red de ahorque de 3,5 cm de entrenudo, se puso al atardecer por 2 h. En campo el material íctico se determinó hasta el nivel taxonómico más específico posible, separándolo por especie y por estación. En el laboratorio se determinó certeramente hasta especie con el uso de claves taxonómicas protocolarias para el grupo. Los ejemplares preservados se encuentran depositados en la colección biológica de vertebrados del Instituto Alexander von Humboldt (IAVH) en Villa de Leyva
2. HERPETOS: La caracterización de herpetofauna se realizó mediante la aplicación de dos metodologías directas principales, las cuales corresponden a encuentros visuales libres (VES) y parcelas diurnas. Se realizaron parcelas de 1 m x 1 m aproximadamente, durante los recorridos diurnos, cada media hora. Las parcelas fueron exploradas de forma exhaustiva para evidenciar la presencia o ausencia de las especies objeto de conservación. Los muestreos de encuentro visual libre (VES) consistieron en una revisión exhaustiva de las zonas de muestreo realizando remoción de hojarasca, levantamiento de troncos y piedras en horas diurnas y solo observación directa sin remoción en horas nocturnas. El esfuerzo de muestreo correspondió a dos personas durante 9 noches y 8 días con una intensidad horaria de aproximadamente 4 horas y media (día y noche respectivamente). Los individuos capturados y sacrificados fueron procesados e ingresados a la colección biológica de vertebrados del Instituto Alexander von Humboldt (IAVH) en Villa de Leyva.
3. AVES: Se utilizaron tres métodos, complementarios uno del otro para la caracterización de la avifauna en la ventana Lipa: apertura de redes de niebla para identificar especies típicas del sotobosque, crípticas y que no se detectan fácilmente, recorridos libres que permiten incluir especies difíciles de detectar que transitan por el dosel y registros de vocalizaciones que ayudan a identificar especies muy vocales que se observan con dificultad. Fueron colocadas ocho redes de niebla de 12 m de largo y 2,6 m de altura y dos redes de 6 m de largo y 2,6 m de altura, en parejas y separadas entre 50 m y 100 m de distancia, en una localidad por cada unidad de muestreo (sabana inundable y selvas del Lipa) y durante dos días consecutivos. El esfuerzo de muestreo en la sabana inundable fue de 159 horas/red, mientras que en el bosque de las selvas del Lipa fue de 160 horas/red. Los individuos capturados y sacrificados fueron procesados e ingresados a la colección biológica de vertebrados del Instituto Alexander von Humboldt (IAVH) en Villa de Leyva. En los recorridos libres fueron incluidos todos los registros visuales (observaciones) y auditivos (vocalizaciones) de las aves.
4. MAMIFEROS: Para la caracterización de la mastofauna en la zona, se utilizaron tres métodos: redes de niebla para murciélagos, trampeo para capturas de mamíferos pequeños y transectos para registro de indicios o avistamientos de mamíferos medianos y grandes en las diferentes coberturas vegetales. Adicionalmente se tuvo en cuenta los registros producto de entrevistas. Para el registro de mamíferos voladores se emplearon 5 redes de niebla (mist-nets) de 12 m de largo por 2,5 m de alto, las cuales fueron ubicadas en tres sitios de muestreo por ecosistema unidad de muestreo (sabana inundable y selvas del Lipa). El esfuerzo de muestreo fue de 3562,5 horas/m2 de red, distribuido en 2062,5 horas/m2 de red en la sabana inundable y 1500 horas/m2 de red en las selvas del Lipa. Para la captura de pequeños mamíferos no voladores se utilizaron en total 50 trampas Sherman®, distribuidas uniformemente en las unidades de muestreo. Se instalaron a una distancia promedio de 10 m entre cada una. Sin embargo, condiciones del terreno y la variedad de microhábitats usados por este grupo de mamíferos (troncos caídos, cerca de la base de árboles, cavidades formadas por las raíces, alrededor de huecos y madrigueras) infirió en la distancia entre algunas de las trampas instaladas. El esfuerzo de muestreo fue de 400 trampas/noche, distribuido en 200 trampas/noche en la sabana inundable y 200 trampas/noche en las selvas del Lipa. Los individuos capturados y sacrificados fueron procesados e ingresados a la colección biológica de vertebrados del Instituto Alexander von Humboldt (IAVH) en Villa de Leyva. Para el registro de mamíferos medianos y grandes se realizaron transectos donde se incluyeron indicios (huellas, excrementos, dormideros, comederos, etc.) y avistamientos durante los recorridos. Se realizaron 4 transectos por cada unidad de muestreo, para un total de 8 transectos para la ventana Lipa. Los transectos variaron en distancia y tiempo, por lo cual es esfuerzo de muestreo fue diferente en cada unidad. El esfuerzo de muestreo total fue de 17,09 horas/hombre distribuido en 6,66horas/hombre en la sabana inundable y 10,44 horas/hombre en las selvas del Lipa. Los indicios o avistamientos evidenciados en otro momento o lugar del muestreo también fueron incluidos, junto con los registros de las entrevistas.
5. PLANTAS: Flora Los métodos aplicados para la elaboración del inventario de plantas fueron: 1) recorridos libres para las selvas del lipa y para las matas de monte de la sabana inundable, teniendo como objetivo cubrir la mayor área posible, 2) muestreos en parcelas de 1mx1m en los bajos, loes raudales, los bancos y los esteros de la sabana inundable, 3) levantamientos del bosque ribereño en un transecto de 50m de longitud paralelo al curso del río, con los datos obtenidos del levantamiento se elaboró un perfil de vegetación para el bosque ribereño del cuerpo de agua conocido como “La Colorada” o “Caño Primores”, y 4) levantamientos de macrófitas, evaluando su presencia sobre la lámina de agua en un tramo de 10 m, perpendicular a la orilla del cuerpo de agua. Para todos los métodos se realizaron identificaciones directas en campo de diferentes plantas y colecciones botánicas de las plantas que se encontraban en estado reproductivo (flor o fruto). Los especímenes fueron depositados en el herbario FMB y algunos duplicados en los herbarios COL, de la Universidad Nacional sede Arauca y de la Universidad de los llanos. Para la corroboración y/o determinación de los especímenes se contó con literatura especializada y con la ayuda de algunos especialistas. Las familias de plantas se organizaron de acuerdo al sistema del APG III (2009).
6. MACROINVERTEBRADOS ACUÁTICOS: Distintos métodos de colecta fueron utilizados de acuerdo con las características particulares de cada sistema, estos son: 1) Método semi-cuantitativo para colectas en sistemas lóticos de zonas bajas: Para la aplicación de los métodos de recolección se tuvieron en cuenta las recomendaciones de Wantzen & Rueda-Delgado (2009) y de Ramírez (2010) para muestreos de tipo cualitativo y semi-cuantitativo en ríos tropicales, además de los criterios para la toma de muestras hidrobiológicas empleadas por el equipo de trabajo del grupo de investigación “LimnoBasE y Biotamar” de la Universidad de Antioquia, por dos métodos a. Colecta en la vegetación ribereña. Este método se empleó en la Ventana Lipa. En cada quebrada se seleccionó un tramo de 50 a 100 m de longitud a lo largo del cauce, en donde se muestreó la vegetación ribereña empleando una red triangula. Se realizaron recorridos cortos (15 minutos en total) con la red barriendo las plantas y las raíces sumergidas. El esfuerzo total de muestreo por tramo fue de 30 minutos. b. Colecta en macrófitos. Para muestrear bancos de macrófitos, tanto flotantes como enraizados (en sistemas lóticos y leníticos), también se empleó la red triangular. En ambos casos se realizó un mayor esfuerzo de captura en las macrófitas dominantes por su abundancia, durante un periodo de 15 minutos. Método semi-cuantitativo para sistemas lóticos de montaña. Se seleccionó un tramo entre 50 y 300 m de longitud a lo largo del cauce, dependiendo de las condiciones propias del terreno y/o de las intervenciones encontradas, en el que se utilizó también una red triangular, ubicándose ésta en sentido contrario al flujo de la corriente y removiendo el lecho de interés. 2) Análisis en laboratorio: Los organismos de los macroinvertebrados, fueron extraídos de cada muestra mediante remoción manual con pinzas de punta fina, y posteriormente fueron identificados hasta la menor categoría taxonómica posible, mediante la utilización de un estereoscopio ZEISS-Stemi VD4 y las claves taxonómicas de Roldán (1988), Machado y Rincón (1989), Wiggins (1996), Posada-García & Roldán-Pérez (2003), Domínguez et al. (2006), Domínguez & Fernández (2009), Merritt et al. (2008).
7. PERIFITO: Se muestrearon tramos de sistemas lóticos y leníticos en buen estado de conservación e intervenidos. Para escoger los sistemas y las estaciones se tuvieron en cuenta los gradientes latitudinal y de elevación. En cada estación se eligió un tramo de al menos 300 metros. En el caso de segmentos con intervenciones antrópica (ej., puentes, extracción de agua, carreteras) y/o con accidentes naturales (ej., derrumbes), el tramo a muestrear se ubicó 300 metros aguas arriba de estas intervenciones. los métodos de colecta de acuerdo con el tipo de sistema 1) Sustrato sumergido: Piedras y troncos (Ventanas Tame y Paipa). En cada tramo y siguiendo ambas orillas se seleccionaron 10 puntos de muestreo dentro de diferentes zonas: bien iluminadas, sombreadas, rápidos, pozos y remansos. Se muestrearon superficies parduzcas resbaladizas situadas en zonas sumergidas del lecho, tales como rocas, cantos rodados y troncos o partes de árboles. La unidad de área fue un cuadrante de 4x4 cm . El contenido raspado se depositó en un frasco con 5 a 10 gotas de lugol y de 4 a 5 gotas de formalina. En el momento de remover el material de las piedras se utilizó un tamiz con un tamaño de poro menor a 20 m. 2) Vegetación acuática: En los tramos más lentos del río Lipa y en las quebradas afluentes de éste, donde la vegetación acuática fue muy abundante y sobresalían las algas filamentosas se muestrearon las algas epifíticas adheridas a macrófitas, macroalgas sumergidas, partes sumergidas de helófitos y algas filamentosas, mediante el siguiente protocolo a) Macrófitos: macroalgas sumergidas y macrófitos emergentes. Las macrófitas pequeñas como Lenna sp., Azolla sp., Salvinia sp. y Lenteja sp., fuero recogidas completas; mientras que de las grandes como Eichornia sp. y Echinodorus sp. se cortaron los peciolos que estaban sumergidos y que se encontraban en estadio adulto, utilizando una tijera. Las plantas pequeñas y los peciolos se guardaron en frascos que contenían un poco de agua destilada. Se almacenaron 20 peciolos por estación. Se evitaron las partes sumergidas de las hojas flotantes (nenúfares) pues éstas no reciben luz directa b) Algas filamentosas (Ventana Lipa). Las algas filamentosas fueron altamente abundantes en la mayoría de las quebradas y en el río Lipa (Foto 5A). La toma de muestras se hizo siguiendo el método del escurrimiento. Este consiste en apretar y escurrir una alta cantidad de filamentos entre cuatro de los dedos de la mano (índice, medio, anular y meñique); el dedo restante (el pulgar) se dirige hacia el frasco en el que se depositará la muestra. Posteriormente se agregan los fijadores (5 a 10 gotas de lugol y 4 a 5 gotas de formalina). Además, se guardaron filamentos completos sin escurrir en frascos plásticos. 2) Análisis de laboratorio: Extracción del perifiton desde las macrófitas. Se limpiaron las raíces, los tallos y las hojas con un pincel muy fino. El removido se pasó por un tamiz con un tamaño de poro inferior a 20 m para evitar que la muestra contuviera arcillas y arenillas. El contenido remanente en el tamiz se vertió en un frasco que contenía diez gotas de lugol y cinco de formalina. Para la remoción del material del tamiz se utilizó agua destilada. Las muestras de ficoperifiton de los sustratos sumergidos, las del material adherido a las macrófitas, las del metafiton y las del sustrato rocoso de las quebradas, se homogenizaron mediante agitación manual para luego depositar una sub-muestra de 3 mL en una cámara de sedimentación del mismo volumen. El conteo se realizó en un microscopio invertido a una magnificación total de 500 X, siguiendo el método de campos al azar (30 campos) mediante una tabla de números aleatorios. Después de llevado a cabo el conteo de los 30 campos se recorrió en zig-zag el fondo de la cámara para registrar organismos poco abundantes. La densidad obtenida se reporta en individuos/5 min para las muestras adheridas a las macrófitas y al metafiton y en individuos/cm2 para las muestras del sustrato rocoso. Se considera como sustrato a las masas de algas flotantes donde se “posa” el metafiton, a las dos macrófitas y a las piedras que se rasparon en la quebrada. Para la determinación taxonómica de las algas se utilizaron las claves de Bicudo & Menezes (2006), Bourrely (1966 y 1970), Cox (1996), Morgan (1920 y 1924), Prescott (1962), Prescott et al. (1975), Sant’Anna (1984).

PLANTAS VASCULARES: Se lograron identificar 358 especies de plantas vasculares pertenecientes a 264 géneros y a 96 familias.

1. Borreria capitata
   rank: species
2. Cosmarium laeve
   rank: species
3. Cosmarium circulare
   rank: species
4. Cosmarium pseudoconnatum
   rank: species
5. Cosmarium quadrum
   rank: species
6. Cosmarium pseudoconnatum
   rank: species
7. Glinus radiatus
   rank: species
8. Eclipta prostrata
   rank: species
9. Ludwigia octovalvis
   rank: species
10. Stemodia durantifolia
    rank: species
11. Ficus pertusa
    rank: species
12. Capparis sola
    rank: species
13. Tetrapterys discolor
    rank: species
14. Aphelandra scabra
    rank: species
15. Centrosema molle
    rank: species
16. Sida serrata
    rank: species
17. Triplaris weigeltiana
    rank: species
18. Guarea guidonia
    rank: species
19. Mabea trianae
    rank: species
20. Senna cobanensis
    rank: species
21. Odontocarya tamoides 
    rank: species
22. Desmodium adscendens
    rank: species
23. Arrabidaea candicans
    rank: species
24. Phoradendron quadrangulare
    rank: species
25. Phithirusa stelis
    rank: species
26. Securidaca coriacea
    rank: species
27. Rhipsalis baccifera
    rank: species
28. Inga ingoides
    rank: species
29. Hymatanthus articulatus
    rank: species
30. Tabebuia ochracea
    rank: species
31. Platymiscium pinnatum
    rank: species
32. Licania apetala
    rank: species
33. Syngonium vellozianum
    rank: species
34. Ischnosiphon leucophaeus
    rank: species
35. Monstera pinnatipartita
    rank: species
36. Costus scaber
    rank: species
37. Clusia minor
    rank: species
38. Iresine diffusa
    rank: species
39. Erythroxilum macrophyllum
    rank: species
40. Calathea inocephala
    rank: species
41. Piper
    rank: genus
42. Isertia haenkeana
    rank: species
43. Juanulloa ochracea
    rank: species
44. Peperomia rotundifolia
    rank: species
45. Uncaria tomentosa
    rank: species
46. Canavalia brasiliensis
    rank: species
47. Tillandsia recurvata
    rank: species
48. Copaifera pubiflora
    rank: species
49. Crateva tapia
    rank: species
50. Desmodesmus bicaudatus
    rank: species
51. Acanthaceae
    rank: family
52. Acrochaetiaceae
    rank: family
53. Alismataceae
    rank: family
54. Amaranthaceae
    rank: family
55. Amphipleuraceae
    rank: family
56. Anacardiaceae
    rank: family
57. Apocynaceae
    rank: family
58. Arecaceae
    rank: family
59. Bignoniaceae
    rank: family
60. Bixaceae
    rank: family
61. Boraginaceae
    rank: family
62. Capparaceae
    rank: family
63. Chrysobalanaceae
    rank: family
64. Combretaceae
    rank: family
65. Dictyosphaeriaceae
    rank: family
66. Dilleniaceae
    rank: family
67. Euphorbiaceae
    rank: family
68. Flacourtiaceae
    rank: family
69. Hydrodictyaceae
    rank: family
70. Lamiaceae
    rank: family
71. Lecythidaceae
    rank: family
72. Lentibulariaceae
    rank: family
73. Malpighiaceae
    rank: family
74. Malvaceae
    rank: family
75. Melastomataceae
    rank: family
76. Molluginaceae
    rank: family
77. Oedogoniaceae
    rank: family
78. Orchidaceae
    rank: family
79. Phytolaccaceae
    rank: family
80. Poaceae
    rank: family
81. Rubiaceae
    rank: family
82. Sapindaceae
    rank: family
83. Zygnemataceae
    rank: family
84. Volvocaceae
    rank: family
85. Verbenaceae
    rank: family
86. Tiliaceae
    rank: family
87. Sterculiaceae
    rank: family

MAMÍFEROS: Para mamíferos voladores se registraron 5 familias, 17 géneros y 17 especies, para mamíferos pequeños no voladores se obtuvo un solo registro perteneciente a la familia Didelphidae, especie Marmosa robinsoni robinsoni, y para mamíferos medianos y grandes se indentificaron a partir de los muestreos en campo y entrevistas 18 familias, 22 géneros y 23 especies.

1. Molossus pretiosus
   rank: species
2. Eumops glaucinus
   rank: species
3. Vampyressa thyone
   rank: species
4. Tonatia bidens
   rank: species
5. Lophostoma brasiliensis
   rank: species
6. Noctilio albiventris
   rank: species
7. Uroderma bilobatum
   rank: species
8. Carollia perspicillata
   rank: species
9. Saccopteryx bilineata
   rank: species
10. Puma concolor
    rank: species
11. Pecari tajaco
    rank: species
12. Rhynchonycteris naso
    rank: species
13. Alouatta seniculus
    rank: species
14. Atelidae
    rank: family
15. Canidae
    rank: family
16. Cebidae
    rank: family
17. Cuniculidae
    rank: family
18. Didelphidae
    rank: family
19. Emballonuridae
    rank: family
20. Felidae
    rank: family
21. Mephitidae
    rank: family
22. Molossidae
    rank: family
23. Myrmecophagidae
    rank: family
24. Noctilionidae
    rank: family
25. Phyllostomidae
    rank: family
26. Procyonidae
    rank: family
27. Sciuridae
    rank: family
28. Tayassuidae
    rank: family
29. Vespertilionidae
    rank: family

AVES: se registraron 194 especies incluyendo las capturadas en redes de niebla y las registradas en los recorridos distribuidas en 54 familias.

1. Amazilia fimbriata
   rank: species
2. Amazona ochrocephala
   rank: species
3. Amazona ochrocephala
   rank: species
4. Amazonetta brasiliensis
   rank: species
5. Brachygalba lugubris
   rank: species
6. Brotogeris jugularis
   rank: species
7. Bubulcus ibis
   rank: species
8. Buteogallus anthracinus
   rank: species
9. Cacicus cela
   rank: species
10. Cairina moscata
    rank: species
11. Camptostoma obsoletum
    rank: species
12. Crotophaga major
    rank: species
13. Cyclarhis gujanensis
    rank: species
14. Dendrocygna autumnalis
    rank: species
15. Dendrocygna viduata
    rank: species
16. Eudocymus ruber
    rank: species
17. Euphonia laniirostris
    rank: species
18. Fluvicola pica
    rank: species
19. Forpus conspicillatus
    rank: species
20. Gymnomystax mexicanus
    rank: species
21. Hirundo rustica
    rank: species
22. Hylophilus flavipes
    rank: species
23. Icterus nigrogularis
    rank: species
24. Jacana jacana
    rank: species
25. Leptopogon amaurocephalus
    rank: species
26. Megascops choliba
    rank: species
27. Milvago chimachima
    rank: species
28. Ortalis ruficauda
    rank: species
29. Parkesia noveboracencis
    rank: species
30. Polytmus guainumbi
    rank: species
31. Quiscalus lugubris
    rank: species
32. Ramphocelus carbo
    rank: species
33. Sakesphorus canadensis
    rank: species
34. Setophaga ruticilla
    rank: species
35. Tapera naevia
    rank: species
36. Tolmomyias flaviventris
    rank: species
37. Vanellus chilensis
    rank: species
38. Zenaida auriculata
    rank: species
39. Laridae
    rank: family
40. Trochilidae
    rank: family
41. Psittacidae
    rank: family
42. Anatidae
    rank: family
43. Anhimidae
    rank: family
44. Rallidae
    rank: family
45. Galbulidae
    rank: family
46. Ciconiidae
    rank: family
47. Donacobidae
    rank: family
48. Furnariidae
    rank: family
49. Hirundinidae
    rank: family
50. Icteridae
    rank: family
51. Threskiornithidae
    rank: family
52. Thraupidae
    rank: family
53. Vireonidae
    rank: family

PECES: Los peces fueron muetreados en cuatro áreas: esteros, ríos, caños, préstamos los cuales se escogieron en función de la presencia de agua. Se emplearon siete artes de pesca los cuáles se usaron según el tipo hábitat.

1. Acestrocephalus sardina
   rank: species
2. Aphyocharax alburnus
   rank: species
3. Bujurquina mariae
   rank: species
4. Caquetaia kraussii
   rank: species
5. Farlowella vittata
   rank: species
6. Hemigrammus barrigonae
   rank: species
7. Roeboides affinis
   rank: species
8. Serrasalmus rhombeus
   rank: species
9. Vandellia cirrhosa
   rank: species
10. Xenagoniates bondi
    rank: species

HERPETOFAUNA: Con relación a los anfibios y reptiles en total se registraron 14 especies de anfibios correspondientes a 5 familias y 18 especies de reptiles correspondientes a 9 familias.

1. Scarthyla vigilans
   rank: species
2. Ameiva ameiva
   rank: species
3. Engysptomops pustulosus
   rank: species
4. Hypsiboas pugnax
   rank: species
5. Leptodactylus bolivianus
   rank: species
6. Leptodeira annulata
   rank: species
7. Oxyrhopus petola
   rank: species
8. Phyllomedusa  hypochondrialis
   rank: species
9. Pleurodema brachyops
   rank: species
10. Relictivomer pearsei
    rank: species
11. Rhinella granulosa
    rank: species
12. Scinax rostratus
    rank: species
13. Anolis tandai
    rank: species
14. Anolis auratus
    rank: species
15. Hypsiboas pugnax
    rank: species
16. Leptodactylus fragilis
    rank: species

MACROINVERTEBRADOS: este ccomponente fue realizado a apartir de estudios realizados por mienbros de la <Universidad de Antioquia como una entidad socia para la investigacion en el marco del proyecto Planeación ambiental para la conservación de la biodiversidad en las áreas operativas de Ecopetrol; se encontro una densidad total de macroinvertebrados de 259.8 ind/min, distribuidos taxonómicamente en 80 Géneros, 49 Familias, 13 Órdenes, seis Clases y tres Fila. Arthropoda fue el Filo mejor representado (256.2 ind/min); los ordenes mas representativos fueron Diptera, Coleoptera y Hemiptera fueron los más representativos en la ventana Lipa, con densidades de 190.73, 20.4 y 18.03 ind/min, respectivamente.

1. Leptoceridae
   rank: family
2. Noteridae
   rank: family
3. Hydrophilidae
   rank: family
4. Belostomatidae
   rank: family
5. Naucoridae
   rank: family
6. Ceratopogonidae
   rank: family
7. Corixidae
   rank: family
8. Polymitarcyidae
   rank: family
9. Palaemonidae
   rank: family
10. Trychodactylidae
    rank: family

PERIFITON: La falta de sustratos rocosos hace que las comunidades perifíticas propias del epiliton no predominen en este sistema, por el contrario las comunidades se asocian a las macrófitas (comunidades del epifiton). Así mismo, la falta de rocas y las altas temperaturas del agua (≥25°C) inhiben la presencia de musgo por tanto el grado de imbibición del sustrato grueso sea pobre; el los cuerpos de agua donde se realizo el mueestreo se encuentran macrófitas como Eichornia sp., Echinodorus sp., Lemna sp. y Eichornia sp.

1. Anomoeoneidaeceae
   rank: family
2. Fragilariaceae
   rank: family
3. Oedogoniaceae
   rank: family
4. Desmidiaceae
   rank: family
5. Stephanodiscaceae
   rank: family
6. Euglenaceae
   rank: family
7. Fragilariaceae
   rank: family
8. Amphipleuraceae
   rank: family
9. Bacillariaceae
   rank: family
10. Oedogoniaceae
    rank: family
11. Naviculaceae
    rank: family
12. Scenedesmaceae
    rank: family
13. Scenedesmaceae
    rank: family
14. Aulacoseiraceae
    rank: family
15. Hydrodictyaceae
    rank: family
16. Pinnulariaceae
    rank: family
17. Pseudanabaenaceae
    rank: family
18. Oedogoniaceae
    rank: family
19. Pleurosigmataceae
    rank: family

El área de estudio se encuentra en jurisdicción de los municipios de Arauca y Arauquita, al noreste del departamento de Arauca, entre las coordenadas geográficas 6° 51' 44,529" , 6° 46' 19,067" de latitud Norte y -70° 56' 44,310", -71° 4' 52,874" de latitud oeste. Abarca un área total de 15042,63 hectáreas, tiene una altura sobre el nivel del mar inferior a los 150 m, temperatura promedio anual superior a los 24 °C. Se definieron para el área de estudio dos paisajes principales: sabana inundable y selvas del Lipa; en el paisaje de sabana inundable están presentes las matas de monte, los raudales, los esteros, los bajos y los bancos. La estacionalidad es bimoda, durante el año se presenta un periodo de lluvia y otro de sequía. La precipitación anual en el ecosistema de sabana se ubica alrededor de 2000 mm. En el sector occidental del área de estudio se encuentran fragmentos de las selvas del Lipa, mientras que en la parte oriental se encuentra el ecosistema de sabana inundable con una amplia zona de humedales conocida localmente como “Raudal de La Barquereña”. Los inventarios de biodiversidad se realizaron en los predios La Barquereña (sector oriental), La Tormenta y Los Laureles (sector occidental).