Registros biológicos de especies de fauna vertebrada terrestre en las centrales de San Carlos y Jaguas - 2006

Study Extent

La Central Hidroeléctrica San Carlos esta ubicada al oriente del departamento de Antioquia, a 150 Km., al oriente de Medellín, el embalse Punchiná está localizado sobre el río Guatapé, cerca del caserío de Puerto Belo. Se caracterizó por presentar en sus alrededores franjas de cobertura vegetal en diferentes estadios de sucesión (rastrojos altos, bajos y bosque secundario). Actualmente, estas áreas han sido intervenidas por los pobladores de la zona aledaña en actividades como cultivos, pastoreo y extracción de madera.

Sampling

Anfibios y reptiles (Herpetofauna) Los datos de herpetofauna se tomaron mediante registro visual a lo largo de transectos de 50 metros de largo por dos de ancho en cada uno de los hábitats (pastizal, rastrojo alto y bosque) (Sutherland, 1996), éstos se ubicaron al azar de tal forma que abarcaron áreas representativas del hábitat estudiado. Los recorridos se realizaron en las horas de la mañana entre las 8:00 a.m. a 12: 00 m y luego en la noche entre las 6:00 p.m. a 8:00 p.m. al iniciar el transecto se realizó una descripción del entorno, como cobertura de dosel, humedad de la hojarasca, inclinación y vegetación, además se registró la hora de inicio y finalización del trayecto. Los recorridos se realizaron por dos personas separadas entre si a una distancia de tres metros y los animales en los muestreos diurnos se buscaron removiendo la hojarasca, los troncos caídos, los agujeros de los árboles, cuerpos de agua y otros, es decir, en todo microhábitat potencialmente donde se encuentra la herpetofauna (Sutherland, 1996), por otra parte en los muestreos nocturnos se registraron los individuos activos en la superficie del suelo, ramas u hojas. Los ejemplares colectados se identificaron en campo y se les midieron algunas variables morfométricas como longitud rostro-cloaca y longitud de la cola. Adicionalmente, se tomaron fotografías de los primeros ejemplares de cada especie en la posición dorsal y ventral, para luego ser liberados en el mismo sitio de captura. Así mismo, se realizó un reconocimiento general de las especies presentes en la zona, a través de observaciones fuera de transectos de los hábitats estudiados, con el fin de enriquecer el listado general de las especies de herpetofauna dentro de la zona. La determinación de anfibios en el campo se emplearon claves taxonómicas de Cochran y Goin (1970), Lynch y Rueda (1998; 1999), Lynch y Ardila (1999), Páez et al., (2002), Renjifo y Lundberg (1999). Mientras que la determinación de reptiles fueron utilizadas las claves de Avila-Pires (1995), Ayala y Castro (Sin publicar), Campell y Lamar (1989), Castro (1978), Páez et al., (2002), Pérez Santos y Moreno (1988), Peters y Orejas Miranda (1970), Renjifo y Lundberg (1999), Wiest (1978). Aves Muestreo con redes de niebla La evaluación de la avifauna se realizó a través de la captura con redes de niebla y muestreo por transectos, en los cuales se efectuaron registros visuales y auditivos en los tres hábitats previamente seleccionados. Se empleó el mismo tipo de red de niebla durante toda la fase del inventario tipo ATX 12, de 12 metros de largo por 2.6 metros de ancho, con una malla extendida de 30 a 36 mm. En total el área de cubrimiento fue de 60 metros de largo por 2.6 metros de ancho (156 m2). Para el inventario se emplearon tres redes desplegadas simultáneamente durante un tiempo mínimo de seis horas diarias, cuando las condiciones climáticas lo permitían. Las redes se abrieron entre las 5:30 a.m. y las 6:00 a.m. El tiempo promedio entre la apertura de la primera y la última red se empleo como el tiempo de apertura. Las redes fueron revisadas con una periodicidad mínima de 30 minutos. Además de la determinación taxonómica de los individuos capturados se registró la siguiente información: peso, longitudes de culmen expuesto, arco del ala, cola, tarso, también, su estado reproductivo y su sexo. Adicionalmente, se tomó un registro fotográfico de los primeros ejemplares de cada especie y sexo. Aves Muestreo por transectos Corresponden a líneas rectas de 100 metros de longitud que atravesaron los diferentes hábitats. Se establecieron dos transectos diarios en cada hábitat, para un total de una repetición. Cada uno de los transectos fue georeferenciado, señalizado en el campo y ubicado en un mapa. Además se determino el rumbo y la morfología del área de cada transecto. El observador caminó lentamente y en silencio hasta un punto y se detuvo, luego de tres minutos anotó todas las aves que logro ver y escuchar durante cinco minutos. Se determinó la especie, el número de individuos y la distancia perpendicular desde donde se encuentraba el ave al observador. Las observaciones se realizaron con la ayuda de binoculares con un poder mínimo de 8 x 42 mm. Cada transecto fue visitado ocho veces durante cada muestreo a la misma hora y con igual duración. Las observaciones se hicieron temprano en la mañana (entre las 5:30 y las 10:00 a.m.) y/o al atardecer (entre las 15:30 y las 18:00 p.m.) siempre y cuando las condiciones climáticas lo permitieron. Se diferenciaron las especies residentes de las migratorias y se tuvo en cuenta observaciones sobre comportamientos específicos, hábitos alimenticios, nidificación en la zona y si se miró si eran endémicas. Los ejemplares observados fueron determinados de acuerdo a las claves taxonómicas de Hilty y Brown (2001), Jaramillo (1993), Jaramillo y Olarte (1996), Negret (2001), Restrepo y Bodhert (2002), Robbins, et al.,(1983), Salaman, et al.,(2001) Mamíferos La identificación más precisa que puede hacerse de un mamífero se logra capturándolo para tomar diferentes medidas, observar características diagnósticas de la especie, como la dentición, cráneos, coloración del pelaje, entre otras (Muñoz, 1986). Para el muestreo de mamíferos en los sitios de estudio, se procuró cubrir el mayor número de variables medioambientales. Cada sitio de muestreo fue monitoreado por períodos no mayores a cinco días, los cuales fueron revisados diariamente y en lo posible evaluados en las dos estaciones climáticas (verano e invierno). En general los métodos para capturar mamíferos vivos incluyen diversos tipos como trampas cajas, cepos, redes y sistemas de inmovilización química aplicados por dardos. Para el presente estudio se utilizaron trampas cajón, redes, captura visual por avistamiento y registro de rastros. Captura de Mamíferos pequeños y medianos (trampas cajón) Para el presente estudio se emplearon trampas de cajón Sherman® y Tomahawk. Las trampas Sherman® son de aluminio galvanizado, poseen un sistema de gatillo que permite su cierre, el cual se activa en el momento en que el animal entra en la trampa al ser atraído por diferentes cebos, los cuales pueden ser selectivos dependiendo de la especie que se quiera capturar. El tamaño de las cajas varía desde 5 cm. x 5 cm. x 10 cm. hasta 10 cm. x 10 cm. x 20 cm., y aun más. Estas trampas se utilizan para la captura de mamíferos terrestres y arborícolas como cricetidos, muridos y marsupiales pequeños y medianos (ratones, marmosas, chuchas o faras) Sánchez et al., 2000. Las trampas Tomahawk® son cajones alargados conformados por estructuras de alambre que dejan una malla de ojo variable. Los sistemas de disparo o cierre de las puertas varían según el modelo y el fabricante, pero en general el sistema de disparo es el mismo, el cual se acciona por medio de gatillos y cebos. Este dispositivo se construye con infinidad de materiales los cuales deben ser de mayor resistencia cuando se requiera capturar animales más grandes y fuertes (Zuluaga, 1995). Para el presente estudio se utilizaron en total 29 trampas: 14 plegables de rejilla tipo Tomahawk® (40,6 cm. x 12,7 cm. x 12,7 cm.) y 15 Sherman® (7,6 cm. x 8.8 cm. x 22,8 cm.). Para las trampas plegables se utilizaron sardinas como cebo y en algunos casos, fruta (papaya, guayaba y mango). Las trampas Sherman® se cebaron con una mezcla de maní, avena, panela y esencia de vainilla, y en algunos casos con mezcla de semillas. Los cebos fueron removidos cada día en las horas de la mañana y en la tarde se recebaba (Herrera-Macbryde et al., 2000). Tanto las trampas Tomahawk® como Sherman® se colocaron al nivel del suelo, cerca de refugios, en hojarascas, matorrales, grietas, cerca de cursos de agua y caminaderos, a una distancia de 10 m entre las trampas. Captura de Mamíferos Voladores (redes) Para la captura de murciélagos se emplearon redes de niebla tipo (mist-nets) de 12 m de largo, 38mm de abertura y 2.6 m de altura, nylon, 4 bolsillos (véase figura 25). Las mallas se ubicaron en diferentes sitios (dentro del bosque, atravesando caminos, rutas de vuelo, campo abierto, bordes de bosque y fuentes de agua) en cada uno de los habitas estudiados (pastizal, rastrojo alto y bosque secundario) (Tirira, 1999). Las redes se extendieron sólo una noche por hábitat a un metro del piso y al nivel del dosel en aquellos sitios donde fue posible ubicarlas. Los muestreos se realizaron entre las 17:30 y las 20:00 horas, períodos de mayor actividad para este grupo de mamíferos (Tirira 1999). Los ejemplares capturados fueron manipulados con guantes de carnaza para evitar lesiones; a cada individuo se registró la localidad, fecha, hora de captura, sexo y el estado reproductivo. Censos Visuales La captura visual se entiende como el acto de detectar la presencia de un espécimen. Esta metodología se implementó en cada hábitat estudiado y en sitios estratégicos de actividad como comederos, orillas de quebradas y en el bosque (Travi y Gaetani, 1985; Rumíz y Sainz, 2001). Las observaciones se realizaron durante los recorridos en el día y en la noche. Otros elementos utilizados para la realización del inventario fueron huellas, excrementos, pelo, restos de alimentación, animales muertos, marcas territoriales, alteraciones en la vegetación, pieles, nidos, cráneos y voces, sonidos u olores, entre otras evidencias (indicios indirectos). Se empleó la metodología propuesta por Wilson et al., (1996). La determinación taxonómica de las especies registradas, se utilizaron las guías Navarro y Muñoz (2000), Navarro et al., 2005, Aranda (2000), Linares (1999), Woodman (1996), Méndez (1993), Woodman y Timm (1993), Wilson y Reeder (1993), Carleton y Musser (1989) y Eisenberg (1989). Para los datos morfométricos de las especies, se tomaron las medidas convencionales según el grupo trabajado; para la determinación de los ejemplares hasta especie, se utilizaron las claves de murciélagos vivientes en Colombia (Muñoz, 1995) entre otras, para los demás mamíferos se utilizaron las claves de Emmons y Feer (1997, 1999) y Tirira, 1999.

Method steps

1. Redes de niebla, transectos, trampas de cajón, censos visuales. Véase descripción del muestreo.

12 familias de Anfibios: Bufonidae, Bufonidae, Centrolenidae, Craugastoridae, Dendrobatidae, Hylidae, Leiuperidae, Leptodactylidae, Microhylidae, Rhinatrematidae, Strabomantidae, Plethodontidae. El 87% de los registros están identificados hasta especie.

1. Bufonidae
   rank: family
2. Bufonidae
   rank: family
3. Centrolenidae
   rank: family
4. Craugastoridae
   rank: family
5. Dendrobatidae
   rank: family
6. Hylidae
   rank: family
7. Leiuperidae
   rank: family
8. Leptodactylidae
   rank: family
9. Microhylidae
   rank: family
10. Rhinatrematidae
    rank: family
11. Strabomantidae
    rank: family
12. Plethodontidae
    rank: family

46 familias de Aves: Accipitridae, Alcedinidae, Apodidae, Ardeidae, Bucconidae, Caprimulgidae, Cardinalidae, Cathartidae, Charadriidae, Coerebidae, Columbidae, Corvidae, Cotingidae, Cracidae, Cuculidae, Emberizidae, Falconidae, Formicariidae, Furnariidae, Furnariidae, Galbulidae, Hirundinidae, Icteridae, Mimidae, Momotidae, Odontophoridae, Pandionidae, Parulidae, Phalacrocoracidae, Picidae, Pipridae, Psittacidae, Rallidae, Ramphastidae, Ramphastidae, Scolopacidae, Steatornithidae, Thamnophilidae, Thraupidae, Tinamidae, Trochilidae, Troglodytidae, Trogonidae, Turdidae, Tyrannidae, Vireonidae. El 100% de los registros están identificados hasta especie.

1. Accipitridae
   rank: family
2. Alcedinidae
   rank: family
3. Apodidae
   rank: family
4. Ardeidae
   rank: family
5. Bucconidae
   rank: family
6. Caprimulgidae
   rank: family
7. Cardinalidae
   rank: family
8. Cathartidae
   rank: family
9. Charadriidae
   rank: family
10. Coerebidae
    rank: family
11. Columbidae
    rank: family
12. Corvidae
    rank: family
13. Cotingidae
    rank: family
14. Cracidae
    rank: family
15. Cuculidae
    rank: family
16. Emberizidae
    rank: family
17. Falconidae
    rank: family
18. Formicariidae
    rank: family
19. Furnariidae
    rank: family
20. Furnariidae
    rank: family
21. Galbulidae
    rank: family
22. Hirundinidae
    rank: family
23. Icteridae
    rank: family
24. Mimidae
    rank: family
25. Momotidae
    rank: family
26. Odontophoridae
    rank: family
27. Pandionidae
    rank: family
28. Parulidae
    rank: family
29. fa
    rank: family
30. Picidae
    rank: family
31. Pipridae
    rank: family
32. Psittacidae
    rank: family
33. Rallidae
    rank: family
34. Ramphastidae
    rank: family
35. Ramphastidae
    rank: family
36. Scolopacidae
    rank: family
37. Steatornithidae
    rank: family
38. Thamnophilidae
    rank: family
39. Thraupidae
    rank: family
40. Tinamidae
    rank: family
41. Trochilidae
    rank: family
42. Troglodytidae
    rank: family
43. Trogonidae
    rank: family
44. Turdidae
    rank: family
45. Tyrannidae
    rank: family
46. Vireonidae
    rank: family

18 familias de Mamiferos:Cuniculidae, Dasypodidae, Didelphidae, Callitrichidae, Sciuridae, Phyllostomidae, Dasyproctidae, Mustelidae, Canidae, Heteromyidae, Cebidae, Procyonidae, Muridae, Myrmecophagidae, Megalonychidae, Echimyidae, Vespertilionidae, Molossidae. El 50% de los registros están identificados hasta especie y el 50% hasta género.

1. Callitrichidae
   rank: family
2. Canidae
   rank: family
3. Cebidae
   rank: family
4. Cuniculidae
   rank: family
5. Dasypodidae
   rank: family
6. Dasyproctidae
   rank: family
7. Didelphidae
   rank: family
8. Echimyidae
   rank: family
9. Heteromyidae
   rank: family
10. Megalonychidae
    rank: family
11. Molossidae
    rank: family
12. Muridae
    rank: family
13. Mustelidae
    rank: family
14. Myrmecophagidae
    rank: family
15. Phyllostomidae
    rank: family
16. Procyonidae
    rank: family
17. Sciuridae
    rank: family
18. Vespertilionidae
    rank: family

8 familias de Reptiles: Colubridae, Corytophanidae, Gymnophthalmidae, Polychrotidae, Scincidae, Sphaerodactylidae, Teiidae, Viperidae. El 48% de los registros están identificados hasta especie.

1. Colubridae
   rank: family
2. Corytophanidae
   rank: family
3. Gymnophthalmidae
   rank: family
4. Polychrotidae
   rank: family
5. Scincidae
   rank: family
6. Sphaerodactylidae
   rank: family
7. Teiidae
   rank: family
8. Viperidae
   rank: family

Departamento de Antioquia, municipios San Carlos y San Rafael.