Biodiversidad asociada a la actualización del Plan de Manejo Ambiental (PMA) para la operación de la planta siderúrgica en Tuta-Boyacá
Citation
Mesa González M S, Ayala Alfonso Z L P, Serna G, Cárdenas Barrero F A, Gil L, Gerdau Diaco (2023). Biodiversidad asociada a la actualización del Plan de Manejo Ambiental (PMA) para la operación de la planta siderúrgica en Tuta-Boyacá. Geotec Ingenieria Ltda. Occurrence dataset https://doi.org/10.15472/mnmlkj accessed via GBIF.org on 2024-08-31.Description
El presente recurso contiene la información soporte tomada en el marco de la actualización del Plan de Manejo Ambiental para la Operación de la Planta Siderúrgica municipio de Tuta, departamento de Boyacá, el cual es elaborado bajo los lineamientos establecidos por los Términos de Referencia para Elaboración de Estudio de Impacto Ambiental para Siderúrgicas, Cementeras y Plantas Concreteras fijas cuya producción de concreto sea superior a 10.000 m3/mes (Corpoboyacá, 2020) la Guía Metodológica para la Elaboración y Presentación de Estudios Ambientales (2018), y la normatividad ambiental vigente.
La toma de información se realizó en el departamento de Boyacá, municipios de Tuta y Sotaquirá entre los meses de mayo, julio y septiembre de 2023 por parte de los profesionales en las áreas ambiental, forestal y fauna, de igual manera involucró también la participación de laboratorios acreditados en la toma de muestras para analizar calidad de agua superficial. Este recurso consta de 435 registros biológicos que se distribuyen en los reinos Animalia (106), Bacteria (20), Chromista (82), Fungi (100), Plantae (80) y Protozoa (47).
Sampling Description
Study Extent
La planta siderúrgica se encuentra localizada en la vereda el Resguardo del municipio de Tuta, en el departamento de Boyacá, al costado oriental de la carretera central del norte entre el km 27 vía Tuna – Paipa. La planta cuenta con un área aproximada de 36.491 ha y por su localización se encuentra en jurisdicción de la Corporación Autónoma Regional de Boyacá (Corpoboyacá).Sampling
La metodología de caracterización del medio biótico en los componentes de Ecosistemas estratégicos, sensibles y/o áreas protegidas, Ecosistemas terrestres, Flora y Fauna, para la elaboración de la Actualización y Modificación del Plan de Manejo Ambiental para la Operación de la Planta Siderúrgica Municipio de Tuta, se realizó de acuerdo con los requerimientos establecidos por la Subdirección Administración de Recursos Naturales de la Corporación Autónoma Regional de Boyacá (Corpoboyacá) en los Términos de Referencia para la Elaboración de Estudio de Impacto Ambiental para Siderúrgicas, Cementeras y Plantas Concreteras Fijas Cuya Producción de Concreto Sea Superior a 10.000 m3/mes; y la Metodología General para la Elaboración y Presentación de Estudios Ambientales, acogida mediante la Resolución 1402 del 25 de julio de 2018. El muestreo de fauna y flora silvestre e hidrobiología se desarrolló en el área de influencia del proyecto, aplicando las metodologías autorizadas en el Permiso de Estudio para la Recolección de Especímenes de Especies Silvestres de la Diversidad Biológica con Fines de Elaboración de Estudios Ambientales, otorgado a la sociedad Geotec Ingeniería Ltda., con NIT. 830.077.873-5, mediante la Resolución 0848-4 del 02 mayo de 2023. Para los puntos monitoreados se llevó a cabo la toma de muestras para la caracterización hidrobiológica (comunidades de perifiton, fitoplancton, zooplancton, macrófitas, bentos y peces), teniendo presente la identificación de los diferentes microhábitats correspondientes a cada uno de los ecosistemas acuáticos. El trabajo de campo para la colecta de muestras del componente hidrobiológico para los posteriores análisis de laboratorio, se llevó cabo por el personal de la empresa AMBIUS S.A.S., con base en las disposiciones del Standard Methods Edición 23 (2017), del Manual de Métodos para el Desarrollo de Inventarios de Biodiversidad (2006) del Instituto Alexander Von Humboldt y de la Metodología General para la Presentación de Estudios Ambientales (2018) del Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible.Method steps
- FLORA EN VEDA: Se realizó un muestreo a través de la metodología Gradstein 2003, dentro del área de intervención para las especies de los grupos taxonómicos de Bromelias, Orquídeas, Musgos, Hepáticas, Anthocerotales y Líquenes, incluidas en la Resolución No. 0213 de 1977 o las normas que lo modifiquen o sustituya, que se desarrollan en diversos hábitos de crecimiento (epífito, terrestre, rupícola). Durante los días 14 y 15 de septiembre de 2023, se realizó la fase de campo para llevar a cabo la caracterización de flora silvestre en veda dentro del área. Es importante aclarar que, la caracterización para este componente se realizó sobre el 100% de los forófitos objeto de intervención ubicados en el área de influencia de la Actualización y Modificación del Plan de Manejo Ambiental para la Operación de la Planta Siderúrgica. Se registraron, marcaron y midieron únicamente las especies arbóreas con DAP mayor o igual a 10 cm y los árboles seleccionados como hospederos se relacionaron con el inventario forestal previamente realizado en el área.
- Para cada una de las especies de flora silvestre en veda encontradas en el área objeto intervención, se tomaron los siguientes datos: cobertura de la tierra, ID del forófito, coordenadas, especie y nombre común, hábito de la especie de flora silvestre en veda, ID de la especie de flora silvestre en veda, características (grupo, abundancia y estratificación) y registro fotográfico. La información se diligenció en formato digital, también se relacionaron datos de ecología tales como hábito de crecimiento, sustrato, distribución vertical y datos de localización. A cada muestra de flora silvestre en veda, se le asignó un código único consecutivo, con su correspondiente identificación, anotando sus características y condición ecológica. Una vez identificadas las morfoespecies de epífitas presentes, se registró su abundancia y su distribución vertical en la base del tronco (Zona a), el tronco (Zona b) y la copa (Zona c). La estratificación se determinó subdividiendo las estructuras mediante la metodología de Johansson (1974) sugerida por Gradstein et al (2003).
- ESPECIES VASCULARES (EV): Cada muestreo se llevó a cabo sobre un forófito en pie, el cual fue posible observar desde la base del tronco hasta las ramas más externas. La distancia de observación fue por medio del método descrito por Went (1940), en áreas del hospedero donde la altura no permitió realizar el conteo de organismos, se hizo uso de binoculares y cámaras de alta resolución, con el fin de facilitar esta labor en los estratos verticales, permitiendo registrar la abundancia y riqueza de estas poblaciones. La toma de muestras del grupo vascular se realiza mediante tijeras de poda para especímenes que se encontraron a la altura del personal y de baja-ramas para estratos superiores, los cuales son rotulados y prensados para su posterior identificación. Adicionalmente y con el fin de aumentar el esfuerzo de muestreo en cada una de las coberturas, se realizaron recorridos libres, para así verificar la presencia y abundancia de especies vasculares hábito terrestre y/o rupícola. Por lo anterior, los puntos de muestreo para dichas especies se encuentran asociados a los forófitos caracterizados.
- ESPECIES NO VASCULARES (ENV): Para la caracterización de musgos, hepáticas y líquenes de hábito cortícola, se realizó la cuantificación de la cobertura (cm2) sobre los forófitos. La cobertura se cuantificó por medio de plantillas de acetato transparente, con un área de 400 cm2 (Iwatzuki, 1960), subdividida en áreas de un (1) cm2. El método consiste en ubicar la plantilla en cada uno de los cuatro puntos cardinales (Gradstein et al. 2003) de cada estrato del forófito. La plantilla se superpuso sobre las epifitas y se midió de forma directa la cobertura en cm2. La colecta de ejemplares para muestras cortícolas, se realizó de forma manual por medio del uso de navajas o machetes, posteriormente se almacenaron en bolsas de papel Kraft, con sílice gel, cada una rotulada con la información correspondiente a la parcela y el sustrato de colecta. Las muestras colectadas en las bolsas de papel se dejaron abiertas a temperatura ambiente para facilitar el proceso de secado. La identificación taxonómica de las epifitas no vasculares se realizó mediante un análisis al estereoscopio, los morfotipos fueron comparados con catálogos de la región y los nombres científicos fueron revisados y corroborados en el Plant List y el Catálogo de plantas de líquenes de Colombia de la Universidad Nacional.
- FAUNA: Para la caracterización de la fauna en el AI de la Planta Siderúrgica del municipio de Tuta se realizaron muestreos entre el 25 y el 30 de mayo de 2023, para el levantamiento de información primaria se implementaron diferentes metodologías como registros ocasionales durante el reconocimiento del área, desplazamientos, transectos de búsqueda y observación, puntos de observación y métodos de trampeo para captura de especímenes.
- HERPETOFAUNA: Se implementaron dos técnicas de muestreo: la primera de búsqueda libre sin restricciones en las horas de principal actividad, la cual permite obtener mayor la información sobre la riqueza específica y la abundancia relativa en menos tiempo de muestreo, inspeccionando activamente los microhábitats presentes en el área y la segunda técnica de trampa de caída o Pitfall con barrera de 20 cm. Se utilizaron de 3 trampas Pitfall o de caída en cada cobertura durante 24 horas/día por 3 días.
- AVES: Para la caracterización de la avifauna en cada una de las unidades de monitoreo definidas, se utilizaron métodos de observación y captura. Se realizaron puntos aleatorios de observación durante algunos recorridos y en la medida de lo posible se tomó el registro fotográfico de los individuos como soporte de la presencia de las especies en el área. Para la observación de aves en los recorridos libres se utilizaron binoculares (10 X 50), cámara fotográfica digital (zoom 100X) y GPS para la georreferenciación de los recorridos. Se implementaron métodos de captura con redes de niebla, 3 redes de niebla de 12 m de largo por 3 m de alto, con ojo de 30 mm. Las redes fueron revisadas aproximadamente cada 15 minutos con el fin de garantizar la supervivencia y el estado físico de cada individuo capturado. La apertura de las redes se realizó desde las 6:30-10:30 horas y de las 15:00-18:00 horas, en cada estación de monitoreo durante 5 días. En cada captura se realizó registro fotográfico al espécimen como soporte de la presencia de las especies en el área y posteriormente fueron liberados en el mismo lugar de captura.
- MAMÍFEROS TERRESTRES: Teniendo en cuenta que el AI de la Planta Siderúrgica es un área en su mayoría de intervención por actividades agrícolas, ganaderas y silvopastoriles a través de los años, la presencia de poblaciones representativas de mamíferos silvestres ha sido diezmada, razón por la cual para el monitoreo de este grupo en particular se buscó principalmente abarcar zonas o parches representativos de coberturas vegetales en los que posiblemente se lograra un mayor éxito de ubicación de estas especies. Se utilizo un método de captura con 10 trampas Sherman, 24 horas / día por 4 días; estratégicamente ubicadas. De igual forma se implementó metodología de foto captura con la instalación de 5 cámaras trampa en puntos clave para la captura de imágenes de mamíferos terrestres.
- MAMÍFEROS VOLADORES: Se implementaron métodos de captura con redes de niebla, 2 redes de niebla de 12 m de largo por 3 m de alto, con ojo de 30 mm. Las redes fueron revisadas aproximadamente cada 15 minutos con el fin de garantizar la supervivencia y el estado físico de cada individuo capturado. La apertura de las redes se realizó desde las 18:30-20:30 horas, en cada estación de monitoreo durante 3 noches. En cada punto se realizó registro fotográfico como soporte del esfuerzo de muestreo.
- HIDROBIOLÓGICOS - PERÍFITON: el método usado para la colecta de los organismos de esta comunidad fue el raspado de un sustrato colonizado por algas perifíticas, de un área conocida, usando un cepillo colector y un cuadrante de 3 cm2. Se tomó una muestra compuesta por el resultado de raspar las algas perifíticas contenidas en el cuadrante de 3 cm2, se realizaron 10 cuadrantes por estación de muestreo, en diferentes sustratos como troncos, hojas, rocas, raíces y materiales alóctonos. Posteriormente, los microorganismos adheridos al cepillo se re suspendieron en un frasco de vidrio ámbar de 120 ml con solución Transeau, luego se realizaron suaves giros a fin de homogeneizar la muestra. Finalmente, las muestras se sellaron, marcaron, registraron en los formatos de campo y se almacenaron en neveras de polipropileno para su traslado al laboratorio.
- MACROINVERTEBRADOS BÉNTICOS: Para la toma de muestras de macroinvertebrados bentónicos se empleó Red Surber de 30*30 cm, para un área efectiva para muestreo de 900 cm2 y un ojo de malla de 500 µm de diámetro. Se colocó sobre el sustrato o lecho del cuerpo de agua con la abertura en dirección opuesta a la corriente; luego, el material de posible refugio de organismos como hojarasca, piedras, arena y macrófitas, se removió con las manos, a fin de que el sustrato se arrastrara hacia el interior del cono de la red, donde los sedimentos junto con los organismos quedaron retenidos. Se realizó la toma de una muestra compuesta de 10 cuadrantes de 900 cm2, por estación de muestreo. Posteriormente, el material fue depositado en bolsas de seguridad, fijado con solución Transeau. El material colectado fue rotulado y almacenado en neveras de polipropileno durante su traslado al laboratorio. A todas las muestras se les realizó un registro en la cadena de custodia.
- FITOPLANCTON: Para el muestreo del fitoplancton se tomó un balde plástico de volumen de 10 litros, su contenido fue vaciado dentro de la red de fitoplancton con un ojo de malla de 20 micras. El esfuerzo de muestreo correspondió a una muestra compuesta por el filtrado de 10 litros de agua por estación de muestreo. La muestra existente en el frasco colector fue depositada en un recipiente de 120 ml y preservada con solución Transeau. Estas muestras se almacenaron en neveras de polipropileno con gel refrigerante para inhibir la contaminación de agentes biológicos y se transportaron al laboratorio para su análisis.
- ZOOPLANCTON: Para el muestreo del zooplancton se tomó un balde plástico de volumen de 10 litros, su contenido fue vaciado dentro de la red de fitoplancton con un ojo de malla de 53 micras. El esfuerzo de muestreo correspondió a una muestra compuesta por el filtrado de 10 litros de agua por estación de muestreo. La muestra existente en el frasco colector fue depositada en un recipiente de 120 ml y preservada con solución Transeau. Estas muestras se almacenaron en neveras de icopor con gel refrigerante para inhibir la contaminación de agentes biológicos y se transportaron al laboratorio para su análisis.
- PECES: La toma de muestras de la comunidad íctica se efectuó empleando una con Nasa activas (jama), esto principalmente en ambientes de poca profundidad, se utilizó una nasa de 1,5 m de largo x 1 m de diámetro y 1,5 cm de diámetro de poro. Se realizarán lances durante 60 minutos en un área de 100 m2 por punto de muestreo. Una vez capturados, los ejemplares fueron medidos (medidas morfométricas), fotografiados y posteriormente liberados (en los casos en que los registros fotográficos no fueron suficientes para su determinación taxonómica, se colectaron los ejemplares). Adicionalmente, se realizó un inventario de los especímenes presentes con los habitantes de la zona y determinación por observación directa.
- MACRÓFITAS: Para la caracterización de esta comunidad se realizó mediante cuadrantes. En cada estación de muestreo se analizaron los parches de macrófitas a partir de una muestra tomada con máximo 10 cuadrantes de 1 m2 por estación de muestreo. Para las especies no conocidas por el profesional que realizó el muestreo se siguió el siguiente procedimiento: se cortaron los individuos a colectar, de tal forma que, en lo posible, tuvieran flor o fruto, para facilitar la determinación. Se colocaron en papel periódico, y se bañaron en alcohol al 70% y se almacenaron en bolsas resellables de forma individual. Por último, se colocaron en la tabla de colección el número de colección con el que se marca cada bolsa y se registró en la tabla las características que se pudieran perder tras el proceso de fijación.
Taxonomic Coverages
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Amphibiarank: class
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Avesrank: class
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Bdelloidearank: class
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Bivalviarank: class
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Branchiopodarank: class
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Collembolarank: class
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Gastropodarank: class
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Hirudienarank: class
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Insectarank: class
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Malacostracarank: class
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Mammaliarank: class
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Maxillopodarank: class
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Monogontarank: class
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Oligochaetarank: class
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Reptiliarank: class
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Turbellariarank: class
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Chrysothricaceaerank: family
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Cladoniaceaerank: family
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Parmeliaceaerank: family
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Physciaceaerank: family
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Ramalinaceaerank: family
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Stereocaulaceaerank: family
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Bacillariophyceaerank: class
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Chrysophyceaerank: class
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Ciliatearank: class
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Bryopsidarank: class
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Chlorophyceaerank: class
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Conjugatophyceaerank: class
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Jungermanniopsidarank: class
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Trebouxiophyceaerank: class
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Euglenidarank: class
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Filosiarank: class
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Lobosarank: class
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Chroococcaceaerank: family
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Nostocaceaerank: family
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Oscillatoriaceaerank: family
Geographic Coverages
Bibliographic Citations
- Aguirre, L. E. 1986. Epífitas, pp. 113-119. En: A. Lot y F. Chiang (comp.). Manual de Herbario. Administración y manejo de colecciones, técnicas de recolección y preparación de ejemplares botánicos. Consejo Nacional de la Flora de México, AC, México. 52 -
- APHA (AMERICAN PUBLIC HEALTH ASSOCIATION), AWWA (AMERICAN WATER WORKS ASSOCIATION) AND WEF (WATER ENVIRONMENT FEDERATION), Op cit., p. 2. 66 -
- Chater, A. O. 1997. Atlas 2000: some notes on pressing specimens. Supplement to Botanical Society of the British Isles News 75 -
- Gradstein, S.R., N.M. Nadkarni, T. Krömer, I. Holz & N. Nöske. 2003. A protocol for rapid and representative sampling of vascular and non-vascular epiphyte diversity in tropical rain forests. Selbyana 24: 105-111. -
- Iwatsuki Z. The Epiphytic Briophyte Communities in Japan. J Hattori Bot Lab. 1960; 22:159-339. 54 -
- Johansson, D.R. 1974. Ecology of vascular epiphytes in West African rai forest. Acta phytogogr. Suecica. 59: 1-136. 48 -
- MINISTERIO DE AMBIENTE Y DESARROLLO SOSTENIBLE. Resolución No. 1402 de 25 de julio de 2018. Op cit., p. 2. -
- Técnicas de campo utilizadas por el Jardín Botánico de Missouri. Compiladas por Ron Liesner con sugerencias del personal técnico, científico y colaboradores. Traducido del inglés por Claudio Tygier, Santa Cruz, Bolivia. Revisión del texto: Carmen Ulloa Ulloa y Rosa Ortiz, Missouri Botanical Garden, abril de 1996. - http://www.mobot.org/MOBOT/molib/spanishfb/intro.shtml. 51
- Valois, H., y Murillo, E. (2010). Musgos y hepáticas: aproximación a su conocimiento en un bosque pluvial tropical de la región chocoana, Colombia. Bioetnia, 7(2), 82-87pp. -
- VILLARREAL, H., ÁLVAREZ, S., CÓRDOBA, F., ESCOBAR, G., FAGUA, F., GAST, H., MENDOZA, M., OSPINA y A.M. UMAÑA. Manual de métodos para el desarrollo de inventarios de biodiversidad. Op cit., p. 2. 67 -
- Went, F. W. (1940). Soziologie der Epiphyten eines tropischen Urwaldes. Ann. Jard. Bot. Buitenz (50), 1-98. 50 -
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