Fauna y flora del municipio de Tame, Arauca

Study Extent

El área de estudio hace parte de la Reserva Forestal Protectora Río Tame, la cual se encuentra localizada en el piedemonte de la Cordillera Oriental, en jurisdicción del municipio de Tame-Arauca. Adicionalmente, para el componente de peces, se realizaron colectas en la cuenca del río Tocoragua-Purare. El área de estudio abarca dos grandes sub-cuencas de la cuenca del río Casanare: la del río Tame y la del río Tocoragua, estas sub-cuencas son de las más representativas del piedemonte de los departamentos de Arauca y Casanare y, paradójicamente, son de las menos exploradas en cuanto a su riqueza y patrones de diversidad florísticos. Se diferenciaron de manera general dos grandes ecosistemas: 1) la sabana de piedemonte, que a su vez incluye mesetas y morichales, y 2) los bosques de piedemonte que pueden ser semicaducifolios o perennifolios. En general la zona presenta dos grandes amenazas: deforestación y sobreexplotación de recursos.

Sampling

Entre los días 16 y 25 de marzo de 2013 se realizó el muestreo y colecta de cinco grupos de fauna (peces, anfibios, reptiles, aves, mamíferos) en la región de Tame, Arauca. Para realizar el inventario de los peces presentes en las cuencas de los ríos Tame y Tocoragua, se realizaron muestreos en dos áreas, morichales dentro de las sabanas, y en los ríos y arroyos torrentosos que recorren el piedemonte. Se emplearon diferentes aparejos de pesca que fueron usados en función de las posibilidades que se encontraron en los diferentes hábitats. En los muestreos para el registro de la herpetofauna se emplearon muestreos de encuentro visual libre (VES); para el registro de la avifauna se emplearon redes de niebla y recorridos libres donde se tuvieron en cuenta observaciones y vocalizaciones; y para el registro de la mastofauna se emplearon redes de niebla, trampas Shermman, transectos, recorridos libres y entrevistas. Entre los días 16 y 25 de marzo de 2013 se realizó el muestreo y colecta para las plantas en la región de Tame. El muestreo fue realizado entre los 600 m y los 1000 m de elevación, en donde se presenta un recambio en la vegetación típica de sabana por una formación de elementos remanentes de selva original, con abundancia de palmas, especies con raíces tabulares, bejucos y epifitas. Para los inventarios de flora se llevaron a cabo cuatro metodologías diferentes, entre las que se encuentran recorridos libres, transectos de 50mx2m, parcelas de 1mx1m, y perfiles de bosque ribereño.

Method steps

1. PECES: Se seleccionaron 12 estaciones de muestreo donde se usó un esfuerzo de pesca estandarizado, el cual consistió en una hora efectiva de pesca/tres personas en quebradas pequeñas, en los demás ecosistemas (morichales y ríos) se usó un esfuerzo de dos horas efectivas/dos personas. En estas jornadas se emplearon cinco artes de pesca, así: 1) Red de Arrastre o de playa (de 5 m de largo y altura de 2 m, entrenudo de 1 mm), en pequeñas quebradas o brazos del río; 2) Atarraya, en pozas y remansos de quebradas y del río; 3) Anzuelos, usados con carrete, este es el arte de pesca más usado en la zona, se realizó en el río en horario nocturno; 4) Remoción manual de piedras, debido a la naturaleza rocosa de la zona, en los arroyos de montaña fue un método muy efectivo; 5) Salabardos, en apoyo a la remoción manual de piedras, corriente abajo se ubicaba estratégicamente para recoger los organismos que el agua arrastraba. En campo el material íctico debidamente rotulado, se determinó hasta el nivel taxonómico más específico posible, separándolo por especie y por estación. En el laboratorio se determinó certeramente hasta especie con el uso de claves taxonómicas protocolarias para el grupo. Los ejemplares preservados se encuentran depositados en la colección biológica de vertebrados del Instituto Alexander von Humboldt (IAVH) en Villa de Leyva y en el Instituto de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional de Colombia (ICN).
2. HERPETOS: La caracterización de herpetofauna se realizó a través de encuentros visuales libres (VES). La captura de los individuos se efectúo en forma manual, tomando a todos los ejemplares observados, cada ejemplar capturado se almacenó en bolsas plásticas y de tela para su posterior procesamiento. Posterior a la toma de datos de cada uno de los individuos y del respectivo registro fotográfico, algunos de los ejemplares coleccionados en campo fueron sacrificados con una inyección de Roxicaina al 2%. Después se procedió a la fijación en formol al 10%. Los individuos capturados y sacrificados fueron procesados e ingresados a la colección biológica de vertebrados del Instituto Alexander von Humboldt (IAVH) en Villa de Leyva. -Muestreo para Anfibios Los muestreos se llevaron a cabo en cada sitio potencial que pueda albergar estas especies (Quebradas, Hojarasca, Bosque, Troncos). Los animales se buscaron siguiendo la técnica de encuentro casual o búsqueda libre sin restricciones. El método consiste en caminar aleatoriamente alrededor de cuerpos de agua, trochas dentro del bosque o sabanas, observando y buscando con mucha atención cualquier especie de anfibio que se pueda encontrar. En este recorrido se remueve la hojarasca, troncos, ramas caídas, agujeros de los árboles, bromelias. Los recorridos fueron efectuados en horas de la mañana (entre 10:00 A.M. y 12:00 PM) y en las horas de la tarde-noche (17:00 y las 23:00). -Muestreo para Reptiles El muestreo para los reptiles se hace conjuntamente con el muestreo de anfibios, dado que estos grupos comparten similares micro-hábitats. En horas de la mañana se realizó una búsqueda en micro-hábitats potenciales que pudieran albergar estos organismos (hojarasca, troncos, rocas, ramas caídas y agujeros de los árboles), mientras que en la noche el muestreo priorizó los recorridos aleatorios, prestando atención a la vegetación circundante y los bordes de bosque siguiendo la técnica de encuentro casual o búsqueda libre sin restricciones.
3. AVES: Se realizaron tres técnicas de muestro: redes de niebla, recorridos libres y grabaciones de cantos con una grabadora Marantz PMD 620, con un micrófono Senheisser ME 66. Se emplearon 8 redes de niebla tipo ATX 12 de 12 m de largo por 2,6 m de ancho con ojo de malla de 36 mm. Éstas fueron instaladas en las horas de la tarde del primer día destinado para redes en los sitios de muestreo y operadas entre las 15:00 y las 18:00 horas en promedio. Al siguiente día las redes eran operadas entre las 06:00 y las 11:00 horas. Simultáneamente se realizaban registros de las aves observadas o escuchadas y no capturadas. Las aves capturadas se marcaron mediante un corte de una de las plumas de la cola, para reconocer ejemplares recapturados. Los individuos capturados y sacrificados fueron procesados e ingresados a la colección biológica de vertebrados del Instituto Alexander von Humboldt (IAVH) en Villa de Leyva y a la colección de Ornitología del Instituto de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional (ICN), lugar donde se confirmaron las determinaciones con precisión de los especímenes. Los recorridos libres se llevaron a cabo por senderos de 4 o 5 km al amanecer y al atardecer, registrando las aves durante las horas de mayor actividad, a través de diferentes coberturas en las cuales los avistamientos visuales y auditivos no consideraron un ancho fijo de observación, transectos o puntos. Para todos los registros anotó la información espacio-temporal. El día de ingreso a la zona, parte del tiempo de traslado entre las unidades de muestreo y salida de la zona fueron observadas algunas especies que no se reportaron por las metodologías anteriormente descritas, estas corresponden a registros adicionales al muestreo.
4. MAMIFEROS: Para evaluar la diversidad de mamíferos se implementó un conjunto de técnicas, con el fin de acumular la mayor cantidad de información y reunir los datos suficientes para tener una idea aproximada de la composición y estructura de la comunidad de mamíferos, estas técnicas se agrupan en tres categorías según el hábito y talla de las especies: Mamíferos voladores: Murciélagos Para el muestreo de murciélagos se utilizó la técnica de captura por medio de redes de niebla. Se usaron seis redes de niebla de dos dimensiones (9 x 3 y 12 x 3) en los diferentes puntos de muestreo, aprovechando los sitios con vegetación natural que representaran posibles sitios de transito como quebradas, senderos, cañadas, entre otros. Las redes se instalaron en el sotobosque (0 a 3 metros del suelo) y fueron revisadas constantemente desde el momento de ser abiertas a las 18:00 horas antes de oscurecer hasta el cierre entre las 22:00 horas y la media noche, dependiendo de la tasa de capturas y actividad de los murciélagos. Pequeños mamíferos no voladores (PMNV): Roedores, musarañas y marsupiales cuyo peso es menor a 150 g. Se instalaron líneas de trampeo convencional con trampas Sherman de dimensiones 8x8x24 y 14x14x40cm. Las trampas se cebaron con una mezcla de mantequilla de maní, avena en hojuelas, esencia de banano y sardinas. Fueron ubicadas en sitios potenciales de paso, forrajeo o refugio de los animales, como debajo de la vegetación densa, troncos caídos, huecos, etc. Cada trampa fue marcada y fueron revisadas a diario con el fin de que los animales capturados no permanecieran mucho tiempo dentro de la trampa. En total se instalaron 50 trampas durante ocho noches de muestreo, para un total de 400 trampas noche. Mamíferos medianos (peso entre 150 g a 5 kg) y grandes. (Peso mayor a 5 kg). Se realizaron recorridos diurnos en búsqueda de observaciones directas o búsqueda de indicios (e.g. huellas, comederos, fragmentos óseos etc.)
5. PLANTAS: Los métodos aplicados para la elaboración de este inventario fueron: 1) recorridos libres en ambos hábitats (sabana y bosque de piedemonte), teniendo como objetivo cubrir la mayor área posible, 2) transectos de 50mx2m, distribuidos al azar y sin sobreponerse, en cada uno se censaron todas las plantas cuyos tallos o peciolos (en caso de palmas acaules) tuvieran un diámetro a la altura del pecho (DAP) mayor o igual a 2,5 cm (CAP mayor o igual a 7,8 cm), y se registró su abundancia, DAP y altura aproximada, además de su hábito de crecimiento y una identificación tentativa, 3) muestreos en parcelas de 1mx1m en la sabana, distribuidos al azar y sin sobreponerse, en cada parcela se registraron las plantas encontrada, se estimó su cobertura y su altura y se determinó su hábito de crecimiento, y 4) levantamientos del bosque ribereño en un transecto de 50m de longitud paralelo al curso del río, con los datos obtenidos del levantamiento ( se registró la altura y la cobertura de la vegetación sobre una línea) se elaboró un perfil de vegetación para el bosque ribereño. Para todos los métodos se realizaron identificaciones directas en campo de diferentes plantas y colecciones botánicas de las plantas que se encontraban en estado reproductivo (flor o fruto). El material botánico se secó en horno y se procesó en las instalaciones del Herbario Nacional Colombiano (COL). Se realizó la identificación de las especies con ayuda de claves taxonómicas, catálogos y listados de especies, recursos virtuales, entre otros. También se recurrió a la comparación directa con ejemplares del Herbario Nacional Colombiano y a la colaboración de los especialistas en grupos taxonómicos particulares como: Julio Betancur (Bromeliaceae, Heliconiaceae, Maranthaceae), Carlos Parra (Myrtaceae), Diego Giraldo-Cañas (Poaceae), José Murillo (Pteridophyta, Annonaceae y Euphorbiaceae), Jhon Infante-Betancour (Convolvulaceae) y Orlando Rivera (Araliaceae). Las colecciones botánicas fueron depositadas en el Herbario Nacional Colombiano (COL), en el herbario del Instituto Alexander von Humboldt (FMB) y aquellos ejemplares con más de dos duplicados se destinarán a herbarios regionales de la Orinoquia. Finalmente, se preparó un catálogo para todas las especies de plantas vasculares presentes en el área de estudio, basado en el estudio de las colecciones hechas durante el desarrollo de este proyecto. Las familias de plantas se organizaron de acuerdo al sistema del APG III (2009). Para cada especie se presenta su nombre científico aceptado son su respectivo autor, los nombres comunes que recibe en la zona de estudio, el hábitat donde se encuentra, se define si es considerada OdC o no y la categoría de amenaza (cuando la tiene).
6. MACROINVERTEBRADOS ACUÁTICOS: Distintos métodos de colecta fueron utilizados de acuerdo con las características particulares de cada sistema, estos son: 1) Método semi-cuantitativo para colectas en sistemas lóticos de zonas bajas: Para la aplicación de los métodos de recolección se tuvieron en cuenta las recomendaciones de Wantzen & Rueda-Delgado (2009) y de Ramírez (2010) para muestreos de tipo cualitativo y semi-cuantitativo en ríos tropicales, además de los criterios para la toma de muestras hidrobiológicas empleadas por el equipo de trabajo del grupo de investigación “LimnoBasE y Biotamar” de la Universidad de Antioquia, por dos métodos a. Colecta en la vegetación ribereña. Este método se empleó en la Ventana Lipa. En cada quebrada se seleccionó un tramo de 50 a 100 m de longitud a lo largo del cauce, en donde se muestreó la vegetación ribereña empleando una red triangula. Se realizaron recorridos cortos (15 minutos en total) con la red barriendo las plantas y las raíces sumergidas. El esfuerzo total de muestreo por tramo fue de 30 minutos. b. Colecta en macrófitos. Para muestrear bancos de macrófitos, tanto flotantes como enraizados (en sistemas lóticos y leníticos), también se empleó la red triangular. En ambos casos se realizó un mayor esfuerzo de captura en las macrófitas dominantes por su abundancia, durante un periodo de 15 minutos. Método semi-cuantitativo para sistemas lóticos de montaña. Se seleccionó un tramo entre 50 y 300 m de longitud a lo largo del cauce, dependiendo de las condiciones propias del terreno y/o de las intervenciones encontradas, en el que se utilizó también una red triangular, ubicándose ésta en sentido contrario al flujo de la corriente y removiendo el lecho de interés. 2) Análisis en laboratorio: Los organismos de los macroinvertebrados, fueron extraídos de cada muestra mediante remoción manual con pinzas de punta fina, y posteriormente fueron identificados hasta la menor categoría taxonómica posible, mediante la utilización de un estereoscopio ZEISS-Stemi VD4 y las claves taxonómicas de Roldán (1988), Machado y Rincón (1989), Wiggins (1996), Posada-García & Roldán-Pérez (2003), Domínguez et al. (2006), Domínguez & Fernández (2009), Merritt et al. (2008).
7. PERIFITO: Se muestrearon tramos de sistemas lóticos y leníticos en buen estado de conservación e intervenidos. Para escoger los sistemas y las estaciones se tuvieron en cuenta los gradientes latitudinal y de elevación. En cada estación se eligió un tramo de al menos 300 metros. En el caso de segmentos con intervenciones antrópica (ej., puentes, extracción de agua, carreteras) y/o con accidentes naturales (ej., derrumbes), el tramo a muestrear se ubicó 300 metros aguas arriba de estas intervenciones. los métodos de colecta de acuerdo con el tipo de sistema 1) Sustrato sumergido: Piedras y troncos (Ventanas Tame y Paipa). En cada tramo y siguiendo ambas orillas se seleccionaron 10 puntos de muestreo dentro de diferentes zonas: bien iluminadas, sombreadas, rápidos, pozos y remansos. Se muestrearon superficies parduzcas resbaladizas situadas en zonas sumergidas del lecho, tales como rocas, cantos rodados y troncos o partes de árboles. La unidad de área fue un cuadrante de 4x4 cm . El contenido raspado se depositó en un frasco con 5 a 10 gotas de lugol y de 4 a 5 gotas de formalina. En el momento de remover el material de las piedras se utilizó un tamiz con un tamaño de poro menor a 20 m. 2) Vegetación acuática: En los tramos más lentos del río Lipa y en las quebradas afluentes de éste, donde la vegetación acuática fue muy abundante y sobresalían las algas filamentosas se muestrearon las algas epifíticas adheridas a macrófitas, macroalgas sumergidas, partes sumergidas de helófitos y algas filamentosas, mediante el siguiente protocolo a) Macrófitos: macroalgas sumergidas y macrófitos emergentes. Las macrófitas pequeñas como Lenna sp., Azolla sp., Salvinia sp. y Lenteja sp., fuero recogidas completas; mientras que de las grandes como Eichornia sp. y Echinodorus sp. se cortaron los peciolos que estaban sumergidos y que se encontraban en estadio adulto, utilizando una tijera. Las plantas pequeñas y los peciolos se guardaron en frascos que contenían un poco de agua destilada. Se almacenaron 20 peciolos por estación. Se evitaron las partes sumergidas de las hojas flotantes (nenúfares) pues éstas no reciben luz directa b) Algas filamentosas (Ventana Lipa). Las algas filamentosas fueron altamente abundantes en la mayoría de las quebradas y en el río Lipa (Foto 5A). La toma de muestras se hizo siguiendo el método del escurrimiento. Este consiste en apretar y escurrir una alta cantidad de filamentos entre cuatro de los dedos de la mano (índice, medio, anular y meñique); el dedo restante (el pulgar) se dirige hacia el frasco en el que se depositará la muestra. Posteriormente se agregan los fijadores (5 a 10 gotas de lugol y 4 a 5 gotas de formalina). Además, se guardaron filamentos completos sin escurrir en frascos plásticos. 2) Análisis de laboratorio: Extracción del perifiton desde las macrófitas. Se limpiaron las raíces, los tallos y las hojas con un pincel muy fino. El removido se pasó por un tamiz con un tamaño de poro inferior a 20 m para evitar que la muestra contuviera arcillas y arenillas. El contenido remanente en el tamiz se vertió en un frasco que contenía diez gotas de lugol y cinco de formalina. Para la remoción del material del tamiz se utilizó agua destilada. Las muestras de ficoperifiton de los sustratos sumergidos, las del material adherido a las macrófitas, las del metafiton y las del sustrato rocoso de las quebradas, se homogenizaron mediante agitación manual para luego depositar una sub-muestra de 3 mL en una cámara de sedimentación del mismo volumen. El conteo se realizó en un microscopio invertido a una magnificación total de 500 X, siguiendo el método de campos al azar (30 campos) mediante una tabla de números aleatorios. Después de llevado a cabo el conteo de los 30 campos se recorrió en zig-zag el fondo de la cámara para registrar organismos poco abundantes. La densidad obtenida se reporta en individuos/5 min para las muestras adheridas a las macrófitas y al metafiton y en individuos/cm2 para las muestras del sustrato rocoso. Se considera como sustrato a las masas de algas flotantes donde se “posa” el metafiton, a las dos macrófitas y a las piedras que se rasparon en la quebrada. Para la determinación taxonómica de las algas se utilizaron las claves de Bicudo & Menezes (2006), Bourrely (1966 y 1970), Cox (1996), Morgan (1920 y 1924), Prescott (1962), Prescott et al. (1975), Sant’Anna (1984).

PLANTAS VASCULARES: En total se registraron 268 especies de plantas agrupadas en 90 familias. Las familias registradas fueron: Acanthaceae, Amaranthaceae, Anacardiaceae, Annonaceae, Apocynaceae, Araceae, Araliaceae, Arecaceae, Aristolochiaceae, Aspleniaceae, Asteraceae, Begoniaceae, Bignoniaceae, Bixaceae, Blechnaceae, Boraginaceae, Burmanniaceae, Burseraceae, Campanulaceae, Celastraceae, Chrysobalanaceae, Clusiaceae, Combretaceae, Convolvulaceae, Costaceae, Cyatheaceae, Cyclanthaceae, Cyperaceae, Dilleniaceae, Dioscoreaceae, Ericaceae, Eriocaulaceae, Erythroxylaceae, Euphorbiaceae, Fabaceae, Gesneriaceae, Heliconiaceae, Hypericaceae, Lamiaceae, Lauraceae, Lecythidaceae, Lentibulariaceae, Linderniaceae, Loganiaceae, Loranthaceae, Lycopodiaceae, Malpighiaceae, Malvaceae, Marantaceae, Marcgraviaceae, Melastomataceae, Meliaceae, Menispermaceae, Moraceae, Myrtaceae, Nyctaginaceae, Ochnaceae, Olacaceae, Onagraceae, Orchidaceae, Orobanchaceae, Passifloraceae, Phyllanthaceae, Piperaceae, Plantaginaceae, Poaceae, Polygalaceae, Polygonaceae, Polypodiaceae, Primulaceae, Pteridaceae, Rubiaceae, Rutaceae, Salicaceae, Santalaceae, Sapindaceae, Sapotaceae, Selaginellaceae, Simaroubaceae, Siparunaceae, Smilacaceae, Solanaceae, Sphagnaceae, Theaceae, Urticaceae, Verbenaceae, Violaceae, Vochysiaceae, Woodsiaceae y Xyridaceae.

1. Actinotaenium
   rank: genus
2. Ankistrodesmus
   rank: genus
3. Arthrodesmus
   rank: genus
4. Bulbochaete
   rank: genus
5. Chaetophora
   rank: genus
6. Closterium
   rank: genus
7. Cosmarium laeve
   rank: species
8. Cosmarium circulare
   rank: species
9. Cosmarium pseudoconnatum
   rank: species
10. Cosmarium quadrum
    rank: species
11. Acalypha diversifolia
    rank: species
12. Acalypha macrostachya
    rank: species
13. Acanthospermum australe
    rank: species
14. Adiantopsis radiata
    rank: species
15. Aeschynomene elegans
    rank: species
16. Aeschynomene paniculata
    rank: species
17. Alchornea latifolia
    rank: species
18. Alternanthera brasiliana
    rank: species
19. Andropogon
    rank: genus
20. Andropogon bicornis
    rank: species
21. Andropogon leucostachyus
    rank: species
22. Andropogon virgatus
    rank: species
23. Micrasterias tropica
    rank: species
24. Micrasterias decemdentata
    rank: species
25. Scenedesmus acuminatus
    rank: species
26. Caladium macrotites
    rank: species
27. Dimerocostus strobilaceus
    rank: species
28. Begonia guaduensis
    rank: species
29. Billia rosea
    rank: species
30. Bulbostylis junciformis
    rank: species
31. Byrsonima verbascifolia
    rank: species
32. Caladium macrotites
    rank: species
33. Calliandra purdiaei
    rank: species
34. Centrosema angustifolium
    rank: species
35. Chamaecrista rotundifolia
    rank: species
36. Chimarrhis glabriflora
    rank: species
37. Cyperus aggregatus
    rank: species
38. Declieuxia fruticosa
    rank: species
39. Dimerocostus strobilaceus
    rank: species
40. Drymonia serrulata
    rank: species
41. Dulacia candida
    rank: species
42. Eleocharis filiculmis
    rank: species
43. Enterolobium contortisiliquum
    rank: species
44. Encyclia ceratistes
    rank: species
45. Enterolobium contortisiliquum
    rank: species
46. Eriocaulon humboldtii
    rank: species
47. Erythroxylum citrifolium
    rank: species
48. Fridericia
    rank: species
49. Geonoma interrupta
    rank: species
50. Guatteria cestrifolia
    rank: species
51. Guatteria recurvisepala
    rank: species
52. Handroanthus albus
    rank: species
53. Heisteria acuminata
    rank: species
54. Heliconia latispatha
    rank: species
55. Hirtella americana
    rank: species
56. Inga punctata
    rank: species
57. Inga sertulifera
    rank: species
58. Inga alba
    rank: species
59. Jacaranda caucana
    rank: species
60. Justicia secunda
    rank: species
61. Lacmellea edulis
    rank: species
62. Lacunaria jenmanii
    rank: species
63. Licania latifolia
    rank: species
64. Lindernia diffusa
    rank: species
65. Lobelia aquatica
    rank: species
66. Ludwigia nervosa
    rank: species
67. Lycopodiella cernua
    rank: species
68. Mandevilla scabra
    rank: species
69. Melochia villosa
    rank: species
70. Miconia albicans
    rank: species
71. Miconia multispicata
    rank: species
72. Mimosa somnians
    rank: species
73. Monstera gracilis
    rank: species
74. Nectandra cuspidata
    rank: species
75. Palicourea
    rank: species
76. Palicourea guianensis
    rank: species
77. Panicum trichoides
    rank: species
78. Passiflora foetida
    rank: species
79. Passiflora spinosa
    rank: species
80. Phyllanthus stipulatus
    rank: species
81. Piper arboreum
    rank: species
82. Polygala violacea
    rank: species
83. Praxelis diffusa
    rank: species
84. Psammisia penduliflora
    rank: species
85. Psychotria poeppigiana
    rank: species
86. Quiina macrophylla
    rank: species
87. Rhynchospora filiformis
    rank: species
88. Rhynchospora junciformis
    rank: species
89. Rinorea lindeniana
    rank: species
90. Rottboellia cochinchinensis
    rank: species
91. Schefflera morototoni
    rank: species
92. Diplacrum reticulatum
    rank: species
93. Setaria palmifolia
    rank: species
94. Smilax spinosa
    rank: species
95. Souroubea guianensis
    rank: species
96. Spermacoce ocymifolia
    rank: species
97. Stylosanthes guianensis
    rank: species
98. Syngonium podophyllum
    rank: species
99. Tetragastris panamensis
    rank: species
100. Terminalia amazonia
     rank: species
101. Tococa guianensis
     rank: species
102. Tonina fluviatilis
     rank: species
103. Triplaris weigeltiana
     rank: species
104. Trichilia pallida
     rank: species
105. Triplaris weigeltiana
     rank: species
106. Urera caracasana
     rank: species
107. Vismia macrophylla
     rank: species
108. Vitex orinocensis
     rank: species
109. Vouarana guianensis
     rank: species
110. Xylopia aromatica
     rank: species
111. Xyridaceae
     rank: family
112. Xyris
     rank: genus
113. Xyris jupicai
     rank: species
114. Zornia guanipensis
     rank: species

MAMÍFEROS:En total se registraron 38 especies de mamíferos, distribuidas en 16 familias. Dieciocho (18) especies de mamíferos voladores, cinco (5) especies de mamíferos pequeños no voladores y quince (15) especies de mamíferos medianos y grandes identificados a partir de los muestreos en campo y entrevistas.

1. Alouatta seniculus
   rank: species
2. Anoura luismanueli
   rank: species
3. Aotus sp.
   rank: genus
4. Artibeus jamaicensis
   rank: species
5. Artibeus lituratus
   rank: species
6. Artibeus obscurus
   rank: species
7. Carollia perspicillata
   rank: species
8. Coendou sp.
   rank: genus
9. Cuniculus paca
   rank: species
10. Dasyprocta sp.
    rank: genus
11. Dasypus novemcinctus
    rank: species
12. Dermanura bogotensis
    rank: species
13. Dermanura phaeotis
    rank: species
14. Desmodus rotundus
    rank: species
15. Didelphis marsupialis
    rank: species
16. Eira barbara
    rank: species
17. Enchistenes hartii
    rank: species
18. Felis catus
    rank: species
19. Glyphonysteris daviesi
    rank: species
20. Hydrochoerus hydrochaeris
    rank: species
21. Lagothrix lagotricha
    rank: species
22. Leopardus tigrinus
    rank: species
23. Lontra longicaudis
    rank: species
24. Marmosa sp.
    rank: genus
25. Micronycteris hirsuta
    rank: species
26. Odocoileus virginianus
    rank: species
27. Oecomys bicolor
    rank: species
28. Oecomys sp
    rank: genus
29. Platyrrhinus barchydephalus
    rank: species
30. Platyrrhinus helleri
    rank: species
31. Potos flavus
    rank: species
32. Proechimys sp.
    rank: genus
33. Puma concolor
    rank: species
34. Sciurus granatensis
    rank: species
35. Sturnira lilium
    rank: species
36. Tonatia saurophila
    rank: species
37. Trachops cirrhosus
    rank: species
38. Vampyressa thyone
    rank: species
39. Vampyriscus bidens
    rank: species

AVES: El área de estudio abarca dos grandes sub-cuencas de la cuenca del río Casanare: la del río Tame y la del río Tocoragua, estas sub-cuencas son de las más representativas del piedemonte de los departamentos de Arauca y Casanare y, paradójicamente, son de las menos exploradas en cuanto a su riqueza y patrones de diversidad; En general la zona presenta dos grandes amenazas: deforestación y sobreexplotación de recursos. La caracterización faunística fue realizada en una salida de campo del 16 al 25 de marzo de 2013, época de inicio de lluvias, por el equipo de investigadores del Instituto Humboldt y la Fundación Yoluka, ONG En total se registraron 140 especies de aves, distribuidas en 35 familias y 15 ordenes.

1. Amazona ochrocephala
   common name: Lora común rank: species
2. Ammodramus humeralis
   common name: Sabanero rayado rank: species
3. Anthracothorax nigricollis
   common name: Mango pechinegro rank: species
4. Ara militaris
   common name: Guacamaya verde rank: species
5. Arremon taciturnus
   common name: Pinzón pectoral rank: species
6. Basileuterus culicivorus
   common name: Arañero cejiblanco rank: species
7. Burhinus bistriatus
   common name: Garcita rayada rank: species
8. Buteo platypterus
   common name: Águila cuaresmera rank: species
9. Buteogallus solitarius
   common name: Águila solitaria rank: species
10. Cathartes aura
    common name: Guala común rank: species
11. Ceratopipra erythrocephala
    common name: Saltarín cabecidorado rank: species
12. Chlorophanes spiza
    common name: Mielero verde rank: species
13. Colinus cristatus
    common name: Perdiz sabanera rank: species
14. Ciccaba nigrolineata
    common name: Batará capirotado rank: species
15. Dendrocincla fuliginosa
    common name: Trepador pardo rank: species
16. Dryocopus lineatus
    common name: Batará capirotado rank: species
17. Elaenia flavogaster
    common name: Elaenia copetona rank: species
18. Euphonia chlorotica
    common name: Eufonia clorótica rank: species
19. Falco Deiroleucus
    common name: Halcón colorado rank: species
20. Formicarius analis
    common name: Gallito cuellinegro rank: species
21. Galbula ruficauda
    common name: Jacamar colirrufo rank: species
22. Glyphorynchus spirurus
    common name: Trepador pico de cuña rank: species
23. Herpsilochmus rufimarginatus
    common name: Hormiguerito alirrufo rank: species
24. Hylophilus aurantiifrons
    common name: Verderón luisucho rank: species
25. Henicorhina leucophrys
    common name: Cucarachero pechigrís rank: species
26. Legatus leucophaius
    common name: Atrapamoscas pirata rank: species
27. Leptopogon amaurocephalus
    common name: Atrapamoscas orejinegro rank: species
28. Lophotriccus pileatus
    common name: Tiranuelo pileado rank: species
29. Megarynchus pitangua
    common name: Atrapamoscas picudo rank: species
30. Manacus manacus
    common name: Saltarín barbiblanco rank: species
31. Myiarchus tuberculifer
    common name: Atrapamoscas crestado rank: species
32. Myrmotherula schisticolor
    common name: Hormiguerito pizarroso rank: species
33. Nyctidromus albicollis
    common name: Bujío rank: species
34. Ortalis ruficauda
    common name: Guacharaca rank: species
35. Orthopsittaca manilata
    common name: Maracana rank: species
36. Pachyramphus polychopterus
    common name: Cabezón aliblanco rank: species
37. Parula pitiayumi
    common name: Reinita tropical rank: species
38. Pauxi pauxi
    common name: Paujíl copete de piedra rank: species
39. Ramphastos ambiguus
    common name: Tucán guarumero rank: species
40. Ramphastos tucanus
    common name: Tucán Dios-te-de rank: species
41. Ramphocelus carbo
    common name: Sangre'e toro rank: species
42. Setophaga ruticilla
    common name: Candelita norteña rank: species
43. Sporophila nigricollis
    common name: Semillero capuchino rank: species
44. Tachyphonus rufus
    common name: Parlotero malcasado rank: species
45. Tangara cyanicollis
    common name: Tangara triguera rank: species
46. Tangara gyrola
    common name: Tangara real rank: species
47. Tolmomyias sulphurescens
    common name: Picoplano azufrado rank: species
48. Turdus albicollis
    common name: Mirla collareja rank: species
49. Tyrannus savana
    common name: Tijereta rank: species
50. Vireo olivaceus
    common name: Verderón ojirrojo rank: species
51. Volatinia jacarina
    common name: Volatinero negro rank: species
52. Vireolanius eximius
    common name: Verderón cejiamarillo rank: species
53. Xenops minutus
    common name: Xenops pardusco rank: species

PECES: El área de estudio abarca dos grandes sub-cuencas de la cuenca del río Casanare: la del río Tame y la del río Tocoragua, estas sub-cuencas son de las más representativas del piedemonte de los departamentos de Arauca y Casanare y, paradójicamente, son de las menos exploradas en cuanto a su riqueza y patrones de diversidad. En total se registraron 29 especies de peces, correspondientes a 23 géneros, 14 familias y 5 órdenes (vale la pena anotar que la especie Astroblepus sp. hace referencia a dos especies diferentes).

1. Astyanax maximus
   common name: Sardinita rank: species
2. Characidium steindachneri
   common name: Sardinita rank: species
3. Creagrutus melasma
   common name: Sardinita rank: species
4. Hemibrycon metae
   common name: Sardinita rank: species
5. Crenicichla wallacei
   common name: Bocón rank: species
6. Hemigrammus rodwayi
   common name: Sardinita rank: species
7. Piabucina erythriniodes
   common name: Guanache rank: species
8. Knodus breviceps
   common name: Sardinita rank: species
9. Pseudopimelodus bufonius
   common name: Pejesapo rank: species
10. Rhamdia quelen
    common name: Barbilla rank: species

HERPETOFAUNA: Para la herpetofauna, se registraron 22 especies, 14 especies de anfibios correspondientes a 6 familias, un orden y 8 especies de reptiles correspondientes a 5 familias y dos ordenes.

1. Allobates cepedai
   common name: Rana nodriza rank: species
2. Leptodactylus fuscus
   common name: Rana picuda rank: species
3. Leptodactylus mystaceus
   common name: Ranas lineas blancas rank: species
4. Tantilla melanocephala
   common name: Coralilla rank: species
5. Leptodeira annulata
   common name: Falsa mapanare rank: species
6. Botrhops atrox
   common name: Mapanare rank: species
7. Scinax wandae
   common name: Rana arboricola gris rank: species
8. Engystomops pustulosus
   common name: Rana pustulosa rank: species
9. Scinax wandae
   common name: Rana arboricola gris rank: species
10. Rhaebo glaberrimus
    common name: Saco liso rank: species
11. Pristimantis carranguerorum
    common name: Rana carranguera rank: species
12. Hypsiboas lanciformis
    common name: Rana en forma de lanza rank: species
13. Leptodactylus fuscus
    common name: Rana picuda rank: species
14. Oxyrhopus petolarius
    common name: Falsa coral rank: species
15. Anolis auratus
    common name: Lagarto rank: species
16. Cnemidophorus gramivagus
    common name: Lagarto Liso rank: species

MACROINVERTEBRADOS: este ccomponente fue realizado a aprtir de estudios realizados por mienbros de la <Universidad de Antioquia como una entidad socia para la investigacion en el marco del proyecto Planeación ambiental para la conservación de la biodiversidad en las áreas operativas de Ecopetrol; encontrado un total de 54.5 ind/min distribuidos en 81 taxones, de los que se identificaron 70 Géneros, 44 Familias, 11 Órdenes y tres Clases, Los Órdenes más abundantes fueron Diptera, Trichoptera y Coleoptera, con densidades de 16.4, 12.8 y 7.3 ind/min. la calidad del agua se midio a partir de los macroinvertebrados encontrados, catalogandola como de clase I, es decir de calidad biológica buena.

1. Belostoma
   rank: genus
2. Pelocoris
   rank: genus
3. Probezzia
   rank: genus
4. Limnocoris
   rank: genus
5. Tenagobia
   rank: genus
6. Argia
   rank: genus
7. Hetaerina
   rank: genus
8. Hexacylloepus
   rank: genus
9. Ischnura
   rank: genus
10. Drepanotrema
    rank: genus

PERIFITON: el perifiton se estudia a partir del convenio entre la Universidad de antioquia y el IAvH con el fin determinar la calidad de agua de estan zona; el muestreo se realizo dentro de diferentes zonas bien iluminadas y sombreadas en rápidos, pozos y remansos. Se muestrearon superficies parduzcas resbaladizas situadas en zonas sumergidas del lecho, tales como rocas, cantos rodados y troncos o partes de árboles ; se encontraron diferentes tipos de plantas acuáticas en aguas relativamente ácidas, oligotróficas y distróficas, las Diatomeas abundaron en esta zona a ecepcion del marichal Oscillatoria y Spirogyra debido al tipo de sustrato rocoso predominante, a su alto contenido de sílice, y a la estabilidad en el flujo de la corriente, finalmente determinado estos cuerpos de agua en buen estado de conservación.

1. Anomoeoneis
   rank: genus
2. Asterionella
   rank: genus
3. Achnanthes
   rank: genus
4. Bulbochaete
   rank: genus
5. Capartogramma
   rank: genus
6. Centritratus
   rank: genus
7. Chroococcus
   rank: genus
8. Desmodesmus
   rank: genus
9. Diatoma
   rank: genus
10. Eunotia
    rank: genus
11. Fragilaria
    rank: genus
12. Frustulia
    rank: genus
13. Gomphonema
    rank: genus
14. Gyrosigma
    rank: genus
15. Kirchneriella
    rank: genus
16. Lepocinclis
    rank: genus
17. Merismopedia
    rank: genus
18. Nitzschia
    rank: genus
19. Surirella
    rank: genus
20. Trachelomonas
    rank: genus
21. Ulnaria
    rank: genus

El área de estudio se encuentra ubicada al suroeste del departamento de Arauca, en el municipio de Tame. Ocupa un área total de 15016,78 hectáreas y hace parte de la Reserva Forestal Protectora Río Tame (zona de amortiguación del Parque Nacional Natural Nevado del Cocuy), la cual se encuentra localizada en el piedemonte de la Cordillera Oriental en las veredas La Casirba y El Oso. La reserva ocupa una superficie aproximada de 1,647 hectáreas y abarca un rango altitudinal entre 700 y 1300 msnm. El clima es tropical húmedo y seco según el sistema de Koeppen, con clima de sabana, en donde se presentan épocas definidas de lluvia (abril hasta noviembre) y sequía (diciembre hasta finales de marzo). La precipitación promedio es de 2800 mm. Las temperaturas son poco variables a lo largo del año, y en promedio se mantienen alrededor de 26 °C, con un máximo entre marzo y abril, y un mínimo al final de la temporada de lluvias. La humedad relativa es de alrededor de 82% en la época de lluvia y de 70 o 75% durante la época seca.