Colección Biológica Universidad EAFIT
Citation
Rueda Isaza Y X, Díaz Nieto J F, Arredondo Salgar J C (2023). Colección Biológica Universidad EAFIT. Version 1.2. Universidad EAFIT. Occurrence dataset https://doi.org/10.15472/qecat1 accessed via GBIF.org on 2024-12-14.Description
La Colección Biológica Universidad EAFIT tiene como objetivo principal la adquisición, catalogación, preservación, e investigación de material biológico perteneciente a macroorganismos y microrganismos siguiendo la clasificación de Burki (2020) y Filo respectivamente. De tal forma, el material biológico perteneciente a los macroorganismos alberga invertebrados, vertebrados y plantas, mientras que el material biológico de microorganismos incluye bacterias, arqueas, hongos y algas.
Como objetivos específicos, la colección tiene: Primero, ser una colección de referencia que permita ser testigo de la diversidad biótica de aquellas regiones de las cuales provenga el material depositado. Segundo, la colección obtendrá nuevo material tanto por el desarrollo de trabajo de campo, así como por la recepción de material de particulares que hayan colectado el material de manera legal. Tercero, permitirá la preservación de material con fines de docencia, es decir, el material será utilizado en prácticas académicas de los diferentes programas de pregrado y posgrado de la Universidad EAFIT. Cuarto, facilitará y fomentará la investigación interinstitucional por medio de la trasferencia de material entre colecciones científicas nacionales e internacionales.
Este conjunto de datos contiene 2.501 registros biológicos distribuidos en 2 reinos: Animalia (2.417) y Fungi (84). Un 81.16% está clasificado a nivel de especie, 13.75% a género, 1.6% a familia y 3.47% a categorías superiores. Los registros se tomaron durante los años 2007 al 2022 en 8 departamentos: Antioquia, Caldas, Chocó, Cundinamarca, La Guajira, Quindío y Risaralda.
Sampling Description
Study Extent
La Colección Biológica Universidad EAFIT custodia especímenes de 33 municipios en ocho de los 32 departamentos de Colombia: Antioquia, Caldas, Chocó, Córdoba, Cundinamarca, La Guajira, Quindío y Risaralda.Sampling
Muestreo de Hongos Los ejemplares de hongos macroscópicos son colectados mediante captura manual en búsqueda activa. Muestreo de Anfibios y Reptiles Se implementó la metodología de inspección por encuentro visual con captura manual (VES) para detectar y capturar anfibios y reptiles. Los muestreos fueron desarrollados durante periodos diurnos (13:00–18:00) y nocturnos (20:00–02:00), y a lo largo de cada transecto fueron evaluados diferentes microhábitats disponibles en cada cobertura (e.g. colchón de hojarasca, alrededor de troncos caídos y piedras, ramas, troncos de árboles, orilla e interior de cuerpos de agua, etc.) buscando eliminar el efecto sobre la detectabilidad causado por la especialización de las diferentes especies. Cada individuo encontrado a lo largo de los muestreos fue considerado como una observación independiente, y al momento de su registro se realizó una descripción detallada de la cobertura donde fue encontrado, microhábitat, cercanía a cuerpos de agua, altura de la percha, tipo de sustrato, sexo, clase de edad, fecha, hora, coordenadas geográficas y altura sobre el nivel del mar. Adicionalmente, fueron tomados todos los datos relevantes relacionados con la historia natural (e.g. canto, reproducción, dieta, etc.) de cada individuo al momento de la observación. Muestreo de Mamíferos Mamíferos pequeños voladores: El muestreo de murciélagos se realizó a través de la instalación de mínimo tres redes de niebla por noche, dispuestas en uno o dos transectos de separación promedio de 20 m entre una y otra. Las redes fueron dispuestas en sitios representativos según la topografía y vegetación del sitio de muestreo y la captura se inició durante la actividad de forrajeo de los murciélagos entre las 17:30 y 18:00 horas para capturar especies de actividad vespertina. Mamíferos pequeños no voladores: Para el muestreo de mamíferos pequeños no voladores se usaron trampas Tomahawk (145x145x410 mm), trampas Sherman (80x90x228 mm) y trampas Victor o ratoneras. Las trampas se ubicaron (a una distancia mínima de 10-15 metros entre cada trampa) pensando en aquellos sitios por donde creemos que podrían pasar estos animales, por lo que se situaron cerca o al lado de cuerpos de agua, en el suelo del bosque donde se veían caminos, al lado del sendero y en cruzaderos como troncos que atraviesan de un lado a otro ya sea un río, el sendero o el mismo bosque. Además, se pusieron trampas altas o de dosel, a 5-7 metros de altura, para intentar capturar aquellos mamíferos arborícolas. Todos los días en la mañana se revisaron y se recebaron las trampas una por una, para verificar si había caído algún animal y para cambiarles el cebo (hecho con avena en hojuelas, mantequilla de maní y esencia de vainilla o de banano), debido a que este se lo pueden comer las hormigas u otros animales, lavarse con la lluvia o perder el olor. Los animales capturados se guardaban en bolsas de tela (100% algodón). Mamíferos medianos y grandes: Los registros de grandes mamíferos como carnívoros se obtuvieron de huellas, heces, huesos y pelos. Muestreo de Insectos Los especímenes de Hemíptera fueron colectados a través de colecta directa, realizando búsquedas activas sobre troncos, hojas, hojarascas en recorridos de dos horas cada 10 horas durante dos meses. Los especímenes del orden Díptera fueron montados sobre placas en bálsamo de Canadá.Method steps
- Conservación de Hongos Las muestras son transportadas en recipientes de plástico estéril y mantenidos a temperatura ambiente hasta su procesamiento. Para el aislamiento a partir de la muestra del hongo macroscópico, se toman pequeños fragmentos del cuerpo de fructificación con bisturí estéril y se colocan en cajas Petri en medio sólido (PDA) con antibiótico y se incuban a 30 °C. Se realizan subcultivos periódicos en placas de PDA hasta obtener el aislamiento puro. El cuerpo fructífero se envia al departamento de micología de la Universidad de Antioquia para su clasificación.
- Conservación de Anfibios y Reptiles Para cada individuo se registra el sexo, la clase de edad, la fecha, la hora, las coordenadas geográficas y la altitud, así como una descripción de la cobertura vegetal y el microhábitat donde se encontró. Los individuos capturados son llevados en bolsas Ziplock (anfibios) y bolsas de tela (reptiles) a un ambiente controlado donde son fotografiados y sacrificados siguiendo la legislación colombiana para el manejo de fauna silvestre (Ley 84 de 1989-Capítulo V; Decreto 1076 de 2015). Se mide cada espécimen, se describe detalladamente todos los caracteres taxonómicamente informativos (por ejemplo, almohadillas digitales, membranas interdigitales, forma de la pupila, escamas, coloración, proporciones corporales) y se recoge una muestra de tejido (hígado o músculo) que se conserva en etanol al 99%. Todos los especímenes se fijan en cámaras herméticas con una solución de formalina tamponada al 10% durante dos o tres días hasta que se transfirieren a etanol al 75%. La identificación taxonómica de anfibios se apoya en la utilización de los textos de Cochran & Goin (1970), Duellman (2001), Savage (2002) y los artículos científicos de Heyer (2005) y Lynch & Rueda-A. (1998, 1999). Para Reptiles se usan los textos Ayala & Castro (Sin Publicar), Campbell & Lamar (2004), Perez-S. & Moreno (1988), Peters & Orejas-M. (1970) y Savage (2002) y los artículos científicos de Ayala & Castro (1983), Harris (1994), Moreno-A. &, Quintero-C. (2015), y Romero-M. et al. (2008). El arreglo taxonómico y sistemático para anfibios empleado en el presente estudio sigue a Frost (2021), mientras que para lagartos, cocodrilos y tortugas sigue a Uetz (2020), y para serpientes a Wallach et al. (2015).
- Conservación de mamíferos: Los especímenes de mamíferos pequeños no voladores, pequeños voladores y medianos y grandes son sacrificados siguiendo las pautas éticas de la Sociedad Americana de Mastozoólogos, a cada individuo se le toman las medidas biométricas estándar: largo total (LT), largo cola (LC), largo pata (LP), largo oreja (LO) y largo del antebrazo (LA), como también el registro del sexo y la condición reproductiva. Los individuos colectados son preparados como especímenes de museo en piel seca y en líquido. A cada individuo se le extrajo una muestra de tejido hepático preservada en el campo en etanol al 99% y posteriormente preservada a –20º C. Para la extracción del tejido se siguió la guía de recolección de tejidos biológicos para análisis genéticos del Instituto Alexander von Humboldt. Identificación y descripción morfológica y morfométrica: Para la identificación y la descripción morfológica de los individuos de las distintas especies se usan las guías taxonómicas de Gardner (2008), York et al. (2019) y Diaz et al. (2021), también se revisan las descripciones originales de algunas especies y las descripciones mencionadas en la bibliografía especializada en taxonomía y sistemática de los géneros y especies evaluadas.
- Conservación de Insectos Los especímenes de Hemíptera son preservados en etanol al 75% para evitar la contaminación bacteriana y fúngica. Los especímenes del orden Díptera son montados sobre placas en bálsamo de Canadá.
Taxonomic Coverages
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Ascomycotacommon name: Hongos rank: phylum
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Basidiomycotacommon name: Hongos rank: phylum
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Anuracommon name: Ranas y Sapos rank: order
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Caudatacommon name: Salamandras rank: order
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Gymnophionacommon name: Cecilias rank: order
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Crocodyliacommon name: Cocodrilos rank: order
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Squamatacommon name: Lagartos y Serpientes rank: order
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Testudinescommon name: Tortugas rank: order
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Rodentiacommon name: Roedores rank: order
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Chiropteracommon name: Murciélagos rank: order
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Carnivoracommon name: Mamíferos placentarios carnivoros rank: order
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Didelphimorphiacommon name: Chuchas y Zarigüeyas rank: order
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Eulipotyphlacommon name: Musarañas rank: order
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Lagomorphacommon name: Conejos y Liebres rank: order
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Paucituberculatacommon name: Ratones runchos rank: order
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Dipteracommon name: Moscas rank: order
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Hemipteracommon name: Chinches y Cigarras rank: order
Geographic Coverages
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Yehimy Xilena Rueda Isazaoriginator
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Juan Fernando Díaz Nieto
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