Monitoreos de los ecosistemas marinos de la bahía Portete, Puerto Bolívar, La Guajira

Study Extent

Sampling

Method steps

1. -Formaciones Coralinas: se establecieron seis parcelas de muestreo, dos situadas dentro del área de influencia de Puerto Bolívar (área A1) y cuatro ubicadas por fuera de esta área (área A2). Las parcelas ubicas en el área A1 (denominadas C5 y C6) y en el área A2 (C9 y C10) pertenecen a formaciones coralinas del tipo 1, con grado de desarrollo intermedio, debido a que no presentan un talud. Adicionalmente, las parcelas C7 y C8 ubicadas en el área A2 se establecieron sobre formaciones coralinas de tipo 1, pero con presencia de talud arrecifal. En cada estación se estimó la profundidad y las coordenadas de cada una de las parcelas. Una vez ubicadas las estaciones de trabajo se delimito un área cuadrada de 10 x 10 m clavando estacas metálicas (1,50 m de longitud) en el fondo marino. Siguiendo la metodología por INVEMAR (1992), se trazaron dentro de cada parcela cuatro transectos de 10 cuadrantes de 1 x 1 m (subdivididos en cuadrículas de 10 x 10 cm) de la siguiente manera: dos paralelos a los extremos y dos diagonales cruzados. En total se cuantificaron 40 cuadrantes por parcela. En cada cuadrante se cuantificó mediante buceo y método de estimación visual la cobertura del sustrato por los componentes más representativos siguiendo las categorías: especies de coral, pastos marinos, coral muerto, sedimento y otros organismos.
2. Pastos Marinos: Se establecieron tres estaciones en el área de influencia de Puerto Bolívar (área A1: T5, T6 y T9) y dos estaciones fuera de está (área A2: T7 y T8). En cada estación se estableció una parcela de 100 m^2 delimitada por estacas, en la que se ubicaron aleatoriamente cinco cuadrantes de 1 m^2 . En cada cuadrante se observaron especies de pastos, porcentajes de cobertura, densidad de pastos mediante el conteo del número de vástagos y hojas en 30 cm^2, altura promedio de los vástagos tomada a partir de cinco vástagos por cuadrante y se tomaron muestras de biomasas rizoidales y foliares extrayendo hojas y raíces en un área de 100 cm^2. Adicionalmente, se utilizó el método propuesto por CARICOMP (2001) para muestrear infauna y biomasa de pastos marinos, el cual consiste en la obtención de cinco muestras aleatorias de pastos y sedimentos dentro del cuadrante de 100 m2. Para esto se usó corazonador de 6 pulgadas de diámetro enterrado sobre fondo vegetado a una profundidad constante. Las muestras obtenidas se preservaron en formol al 4 % para su posterior procesamiento en el laboratorio de INVEMAR en Santa Marta. Para la descripción de la fauna asociada a este ecosistema, se identificaron los ejemplares de macrofauna presentes en seis cuadrantes de 1 m^2. Dentro de cada parcela se realizaron observaciones generales del entorno, como la forma de la pradera y la profundidad.
3. Macroinfauna de fondos blandos: Se establecieron dentro del área de influencia A1 las estaciones F1,F2,F5,F7 y F8.Por fuera del área de influencia A2 se consideraron las estaciones F3 y F4. Para los muestreos ejecutados en los diferentes años se empleó la draga van Veen, pero con diferentes especificaciones. En el año 2003 y 2004 se utilizó una draga van Veen que cubría un área de 0.075 m^2 con la que hicieron dos lances por estación, los cuales conformaron un área muestral por estación de 0.15 m^2. Para el año 2009 al 2010 y 2015 al 2016 se utilizó una draga de 0.05 m^2, haciendo dos lances por estación, conformando un área muestral de 0.1 m^2. En el 2020 y 2021 se empleó una draga van Veen, con un área de muestreo de 0.04 m^2, la cual fue lanzada en tres ocasiones en cada estación, con el fin de tomar 0.1 m^2, que es el área mínima de muestreo para comunidades macroinfaunales (Holme y McIntyre, 1971; Guzmán-Alvis, 1993; Guzmán-Alvis y Díaz ,1993 y 1996; Córdoba-Tejada, 1997; Guzmán-Alvis y Solano, 1997). Cada dragado obtenido se almaceno por separado en dos bolsas debidamente etiquetadas, a las que se le adicionó una solución narcotizante, (cloruro de magnesio 70 gr*L^-1 de agua), la cual facilitó la identificación en laboratorio de los organismos al mantenerlos relajados durante su muerte (Baguley et al., 2006). Después de 10 minutos se agregó una solución de formalina al 10 % preparada con agua de mar, que sirvió a la vez como agente fijador y como colorante, pues previamente se adicionó rosa de bengala (1 %), tinte que se adhiere a los epitelios de los organismos facilitando su posterior separación en laboratorio.
4. Manglares: Se establecieron siete estaciones. Se ubicaron cinco estaciones dentro del área de influencia de Puerto Bolívar (área A1: M1, M2, M5, M6 y M7) y dos fuera de ésta (área A2: M3 y M4). En cada una de las estaciones se delimitó un transecto perpendicular al cuerpo de agua principal con longitud máxima de 100 m, o hasta el final de la franja de mangle siguiendo el método descrito por Scheaffer–Novelli y Cintrón–Molero (1986). Sobre dicho transecto se delimitaron parcelas permanentes de crecimiento de 100 m^2 (10 X 10 m), separadas 10 metros entre sí. Al interior de las parcelas se identificaron y contaron todos los árboles con diámetro a la altura del pecho (DAP) mayor a 2,5 cm, midiéndoles la altura total y el DAP. Los árboles medidos se marcaron con pintura para evitar el reconteo de estos. El análisis de regeneración natural se determino mediante la densidad de plántulas y propágulos de cada una de las especies de mangle, encontrados en tres cuadrantes de 1 m^2 dispuestos al azar de cada una de las parcelas permanentes de crecimiento. Por otro lado, se midieron parámetros fisicoquímicos sobre los transectos. Se midió cada 10 m la temperatura y la salinidad del agua superficial e intersticial a 0,5 y 1,0 m de profundidad, con un conductímetro YSI 30. El agua intersticial se extrajo con tubos de PVC de 1½ y 1¼ pulgadas acoplados uno dentro del otro. El nivel de inundación o freático se midió con una regla. La información se recolectó en las siete estaciones de muestreo durante la época de lluvias y seca de los años de monitoreo en la zona.

1. Actinopteri
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2. Adenophorea
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3. Anopla
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4. Anthozoa
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5. Ascidiacea
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6. Asteroidea
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7. Bivalvia
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8. Cephalocarida
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9. Chromadorea
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10. Clitellata
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11. Copepoda
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12. Demospongiae
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13. Echinoidea
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14. Elasmobranchii
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15. Enoplea
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16. Enteropneusta
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17. Gastropoda
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18. Gymnolaemata
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19. Hexapoda
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20. Holothuroidea
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21. Hoplonemertea
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22. Hydrozoa
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23. Leptocardii
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24. Lingulata
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25. Malacostraca
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26. Ophiuroidea
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27. Ostracoda
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28. Palaeonemertea
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29. Phascolosomatidea
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30. Pilidiophora
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31. Polychaeta
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32. Polyplacophora
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33. Pycnogonida
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34. Scaphopoda
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35. Scyphozoa
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36. Sipunculidea
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37. Thecostraca
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38. Turbellaria
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1. Globothalamea
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2. Phaeophyceae
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1. Florideophyceae
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2. Magnoliopsida
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3. Ulvophyceae
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