Macroinvertebrados bentónicos de la región del Valle de Tenza, Boyacá, asociados a las quebradas Las Moyas (Garagoa), La Quenquenera (Chinavita), Aguablanca y Colorada (La Capilla)

Study Extent

Sectores localizados en los Distritos Regionales de Manejo Integrado del área del Valle de Tenza, particularmente, las quebradas Las Moyas (Garagoa), Quenquenera (Chinavita), Aguablanca y Colorada (La Capilla)

Sampling

El muestreo y análisis de macroinvertebrados es de tipo cuantitativo, con el fin de estimar la densidad de los diferentes grupos taxonómicos por m2. Para lograrlo, se utiliza el criterio multihábitat, con base en la identificación y selección de diferentes sustratos o hábitats y flujos contrastantes, por tramos de 100 metros por punto de muestreo.

Method steps

1. Establecimiento de un tramo de 100 metros por la quebrada de estudio, en el cual se tomaron diez submuestras teniendo en cuenta el criterio multihábitat a partir de la identificación de los sustratos presentes.
2. Identificación de los sustratos y flujos de la corriente.
3. Registro en punto de muestreo de las variables in situ: pH, conductividad, oxígeno disuelto, temperatura, sólidos disueltos totales y salinidad.
4. Toma de muestras de parámetros microbiológicos y fisicoquímicos, para análisis en laboratorio.
5. Para la toma de muestras de macroinvertebrados, se utilizo la red tipo Surber y la red tipo D.
6. Muestreo con la red tipo Surber, con la red ubicada a contracorriente, verificando que exista flujo de corriente por la malla y cuidando que el agua no sobrepase el marco de la red; se remueve el sustrato en el área demarcada por la red, asegurándose de mover el material vigorosamente, para que los individuos adheridos caigan al fondo de la red. Se lava la red con el agua de la misma fuente, teniendo cuidado de no generar pérdida de organismos, de forma que los macroinvertebrados y el sustrato recolectado vayan al fondo de la red. Se recoge la muestra contenida y se deposita en una bolsa de cierre hermético, la cual contendrá todas las muestras de los subtramos recolectados con este método de muestreo.
7. Muestreo con la Red tipo D, se toma la red por el mango y se posiciona en el lecho del rio en dirección aguas abajo al sustrato por recolectar, verificando que no queden espacios bajo el marco de la red. Se remueve por un minuto el sustrato pateando vigorosamente en la dirección de la corriente de agua hacia la red. La red se sube rápidamente desde el mango con el fin de evitar la pérdida de la muestra. Posteriormente se lava y retira el material grande dentro de la red, y el material recolectado se deposita en una bolsa de cierre hermético. Se repite el procedimiento en el tramo cubriendo los sustratos presentes. La bolsa contendrá todas las submuestras obtenidas en el tramo de los 100 m por método de muestreo usado. Tener en cuenta que, en cada uno de los submuestreos, se realizó durante un minuto la remoción del sustrato con esta red, con el fin de lograr un muestreo total de 10 minutos.
8. Se lavaron las redes completamente al finalizar el muestreo en el tramo y antes de desplazarse al próximo punto de muestreo.
9. Las muestras tomadas con ambos métodos se preservaron con alcohol al 70 %, y se rotulo cada bolsa con la información por punto de muestreo, al igual que el formato de toma de información en campo.
10. El transporte de las muestras se realizó en recipientes plásticos que garantizaron la integridad de las mismas.
11. Posterior al análisis de las muestras, los individuos fueron preparados y almacenados en frascos de vidrio para ser depositados en una colección avalada por el Instituto Alexander von Humboldt.

El presente conjunto de datos cuenta con 967 registros biológicos, los cuales se encuentran clasificados en 5 filos, 7 clases, 16 órdenes, 53 familias, 3 subfamilias, 4 tribus, 74 géneros y 5 especies. El 1.7% se encuentra clasificado a nivel de especie, el 64% a género, 10% a tribu y 23% a categorías superiores.

1. Ceratopogoninae
   rank: subfamily
2. Limoniinae
   rank: subfamily
3. Allopetalia
   rank: genus
4. Orthocladiinae
   rank: subfamily
5. Anacroneuria
   rank: genus
6. Anchytarsus
   rank: genus
7. Atanatolica
   rank: genus
8. Atopsyche
   rank: genus
9. Atrichopogon
   rank: genus
10. Austrolimnius
    rank: genus
11. Austrotinodes
    rank: genus
12. Baetodes
    rank: genus
13. Chironomini
    rank: tribe
14. Pentaneurini
    rank: tribe
15. Tanytarsini
    rank: tribe
16. Ceratopogonini
    rank: tribe
17. Sarcoptiformes
    rank: order
18. Neoelmis
    rank: genus
19. Macrogyrus
    rank: genus
20. Psephenus
    rank: genus
21. Probezzia
    rank: genus
22. Farrodes
    rank: genus
23. Rhagovelia tenuipes
    rank: species
24. Smicridea
    rank: genus
25. Polycentropus
    rank: genus
26. Dugesia
    rank: genus
27. Lumbriculidae
    rank: family
28. Empididae
    rank: family
29. Limoniidae
    rank: family
30. Hexatoma
    rank: genus
31. Onychelmis
    rank: genus
32. Corynoneura
    rank: genus
33. Onconeura
    rank: genus
34. Pentaneura
    rank: genus
35. Stenochironomus
    rank: genus
36. Simulium
    rank: genus
37. Thraulodes
    rank: genus
38. Rhagovelia angustipes
    rank: species
39. Oxyethira
    rank: genus
40. Marilia
    rank: genus
41. Xiphocentronidae
    rank: family
42. Diptera
    rank: order
43. Baetidae
    rank: family
44. Odonata
    rank: order
45. Metrichia
    rank: genus
46. Entomobryidae
    rank: family
47. Hydroptilidae
    rank: family
48. Hydrozetidae
    rank: family
49. Scirtidae
    rank: family
50. Staphylinidae
    rank: family
51. Nematoda
    rank: phylum
52. Heterelmis
    rank: genus
53. Clogmia
    rank: genus
54. Gigantodax
    rank: genus
55. Leptohyphes
    rank: genus
56. Phylloicus
    rank: genus
57. Helicopsyche
    rank: genus
58. Trombidiformes
    rank: order
59. Rhagovelia armata
    rank: species
60. Rhagovelia obesa
    rank: species
61. Macrelmis
    rank: genus
62. Stilobezzia
    rank: genus
63. Contulma
    rank: genus
64. Oecetis
    rank: genus
65. Hydraena
    rank: genus
66. Coleoptera
    rank: order
67. Forcipomyia
    rank: genus
68. Hexanchorus
    rank: genus
69. Maruina
    rank: genus
70. Tabanidae
    rank: family
71. Neoatriplectides
    rank: genus
72. Cantharidae
    rank: family
73. Culoptila
    rank: genus
74. Psephenops
    rank: genus
75. Grumichella
    rank: genus
76. Polyplectropus
    rank: genus
77. Dolichopodidae
    rank: family
78. Hemerodromia
    rank: genus
79. Nanomis
    rank: genus
80. Ulmeritoides
    rank: genus
81. Rhionaeschna
    rank: genus
82. Nectopsyche
    rank: genus
83. Dixella
    rank: genus
84. Pseudodisersus
    rank: genus
85. Xenelmis
    rank: genus
86. Leptohyphidae
    rank: family
87. Tricorythodes
    rank: genus
88. Limnocoris
    rank: genus
89. Corydalus
    rank: genus
90. Hetaerina
    rank: genus
91. Gomphidae
    rank: family
92. Perithemis
    rank: genus
93. Lutrochus
    rank: genus
94. Xiphocentron
    rank: genus
95. Stegoelmis
    rank: genus
96. Hydrophilidae
    rank: family
97. Chelifera
    rank: genus
98. Charmatometra bakeri
    rank: species
99. Limnogonus
    rank: genus
100. Lepidoptera
     rank: order
101. Hyalella
     rank: genus
102. Perilestes
     rank: genus
103. Hydroptila
     rank: genus
104. Neotrichia
     rank: genus
105. Paltostoma
     rank: genus
106. Planorbidae
     rank: family

El muestreo se realizó en el departamento de Boyacá, en los municipios Chinavita, Garagoa y La Capilla, en los sectores localizados en los Distritos Regionales de Manejo Integrado del área del Valle de Tenza, particularmente, las quebradas Las Moyas (Garagoa), Quenquenera (Chinavita), Aguablanca y Colorada (La Capilla)