Monitoreo de la calidad del agua y los grupos hidrobiológicos del río Riofrío en el área de influencia de las Pequeñas Centrales Hidroeléctricas Riofrío I y Riofrío II

Study Extent

Sampling

Quality Control

Method steps

1. Perifiton: En el primer muestreo del 18 de mayo 2017 se utilizó un cuadrante de 6 cm2 y un cepillo. En cada punto de muestreo fueron removidos 20 cuadrantes para alcanzar un área total efectiva de 120 cm2. El material de cada remoción fue diluido en agua del mismo río utilizando frascos blancos de 60 ml y fijado con solución transeau en una proporción 1:1 para posteriormente ser etiquetados y transportados al laboratorio para su análisis. En el segundo muestreo el día 19 de septiembre de 2017 se realizó la remoción del material adherido a diferentes tipos de sustratos sumergidos, principalmente de tipo rocoso utilizando un cuadrante de 10 cm2 y un cepillo. En cada punto de muestreo fueron removidos 10 cuadrantes para alcanzar un área total efectiva de 100 cm2. El material de cada remoción fue diluido en agua del mismo río utilizando frascos blancos de 50 ml y fijado con solución transeau y Lugol para posteriormente ser etiquetados y transportados al laboratorio para su análisis.
2. Macroinvertebrados: En el primer muestreo (18 de mayo 2017), en cada una de las estaciones, se seleccionó aleatoriamente un transecto de máximo 100 m2 para realizar la recolecta de macroinvertebrados acuáticos. Se empleó el método cuantitativo de red Surber y de una red con marco de 30 * 30 cm y ojo de malla de 250 μm. En cada transecto y estación se hicieron tres repeticiones (remociones) en los coriotopos disponibles tales como pozos someros, canal principal, macrófitas y hojarasca. Los organismos recolectados se fijaron en alcohol al 96% y se depositaron en tarros plásticos de boca ancha y capacidad de 500 ml, los cuales fueron etiquetados y organizados en neveras de icopor. En el segundo muestreo (19 de septiembre de 2017), en cada una de las siete estaciones evaluadas en el río Riofrío, se realizaron remociones de macroinvertebrados acuáticos utilizando una red Surber (método cuantitativo), con marco metálico de 30 * 30 cm para un área efectiva de 900 cm2 y una bolsa colectora de nylon con diámetro de ojo de malla de 250 µm. Se hicieron tres repeticiones, las cuales quedaron incluidas en un transecto de máximo 100 m dependiendo de las condiciones del cauce, abarcando además los diferentes coriotopos como hojarasca, sedimento, grava, rápidos, arena, musgo, etcétera. En cada remoción se agitó manualmente el área de sustrato delimitada por el marco, en sentido contracorriente durante un (1) minuto. El contenido de las remociones se dispuso en una bandeja plástica de color blanco donde se limpiaron y separaron los organismos con ayuda de pinzas suaves. Se recogió el material recolectado en recipientes plásticos de 250 ml de capacidad y se fijó con alcohol al 70%. Las muestras de todas las estaciones se organizaron en nevera de poliestireno expandido (icopor) para su transporte hasta el laboratorio.
3. Peces: En el primer muestreo (18 de mayo 2017) se empleó una atarraya con longitud de 2 m y ojo de malla de 4 centímetros, haciendo 25 lances por estación. Los animales capturados fueron medidos y pesados y posteriormente liberados. Adicionalmente se empleó una red multihabitat con la cual se realizaron 15 arrastres por punto de muestreo procurando evaluar un área de 1000 m2 en un tiempo no mayor a una hora. Se definió una proporción de individuos para fijar con formol al 10%, previo adormecimiento con aceite de clavo, en frascos de 700 ml debidamente rotulados para su procesamiento en laboratorio. En el segundo muestreo (19 de septiembre de 2017) se utilizaron 2 artes de pesca, atarraya y electropesca. La atarraya, de longitud de 2 m y ojo de malla de 4 centímetros, fue empleada desde las márgenes del río en zonas donde las rocas no impidieran su su uso. Se realizaron 20 lances por estación. Para la electropesca se realizaron 10 barridos en un transecto de 100 m2 en aproximadamente 20 minutos por cada punto de muestreo, en zonas de refugio como palizadas, chorros y bancos de arena, y zonas vadeables con presencia de vegetación marginal y/o sumergida. Únicamente un parte de los peces capturados se colectaron, se depositaron manualmente en recipientes plásticos de boca ancha de 500 ml de capacidad y se fijaron en formol para su traslado al laboratorio, donde se preservaron en alcohol etílico al 70%.

1. Coleoptera
   common name: Escarabajos rank: order
2. Diptera
   rank: order
3. Ephemeroptera
   rank: order
4. Haplotaxida
   rank: order
5. Hemiptera
   rank: order
6. Hygrophila
   rank: order
7. Lumbriculida
   rank: order
8. Megaloptera
   rank: order
9. Odonata
   rank: order
10. Plecoptera
    rank: order
11. Trichoptera
    rank: order
12. Tricladida
    rank: order
13. Trombidiformes
    rank: order
14. Characiformes
    common name: Peces rank: order
15. Cyprinodontiformes
    common name: Peces rank: order
16. Siluriformes
    common name: Peces rank: order
17. Brycon henni
    common name: Sabaleta rank: species
18. Hemibrycon boquiae
    common name: Sardina rank: species
19. Chaetostoma leucomelas
    common name: Corroncho rank: species

1. Cocconeis
   rank: genus
2. Cymbella
   rank: genus
3. Eunotia
   rank: genus
4. Fragilaria
   rank: genus
5. Gomphonema
   rank: genus
6. Melosira
   rank: genus
7. Navicula
   rank: genus
8. Nitzschia
   rank: genus
9. Pinnularia
   rank: genus
10. Rhoicosphenia
    rank: genus
11. Synedra
    rank: genus

1. Lyngbya
   rank: genus

1. Netrium
   rank: genus